FSBEI HPE "Čuvašská štátna poľnohospodárska akadémia"

Klinika infekčných a parazitárnych chorôb

K téme:
Mikrobiológia krmív.

Absolvuje študent 2. ročníka
Agronomická fakulta
2. skupina 3. podskupina
Egorov M.N.
Skontroloval: Tikhonova G.P.

Čeboksary 2013
Obsah:
* PROCESY VZNIKAJÚCE PRI SUŠENÍ SENA A OSTATNÉHO KRMIVA
* KONZERVOVANIE POTRAVÍN

Najbežnejším spôsobom konzervovania zelenej hmoty a iného krmiva je sušenie. Sušenie sena sa vykonáva rôznymi spôsobmi - v riadkoch, rolkách, v nárazoch, na vešiakoch a pod. Aj v suchom počasí a rýchlom sušení dochádza k určitým stratám. živiny v krmive sú nevyhnutné, pretože dýchanie a ďalšie enzymatické procesy pokračujú v rastlinnej hmote. V prípade viac-menej zdĺhavého sušenia sa úloha uvedených procesov výrazne zvyšuje, čo zase vedie k zvýšeniu strát, ktoré sú vo veľkej miere spojené s množením mikroorganizmov na vlhkej rastlinnej hmote. Na obmedzenie straty živín zvyknú využívať umelé sušenie sena pomocou núteného vetrania atmosférickým alebo ohriatym vzduchom.

Pri sušení krmiva sa počet životne dôležitých mikroorganizmov v nich postupne znižuje. Napriek tomu na neškodných potravinách rastlinného pôvodu vždy nájdete väčší či menší počet mikrobiálnych buniek charakteristických pre epifytickú mikroflóru, ako aj iné mikroorganizmy, ktoré sa sem dostávajú z pôdy a vzduchu. Sú v anabiotickom stave.

Keď sa uskladnené krmivo navlhčí, začnú v ňom rýchlo prebiehať mikrobiologické procesy a zároveň sa zvýši teplota. Tento jav, nazývaný samozahrievanie (termogenéza), je spojený s životne dôležitou aktivitou mikroflóry.

Mikroorganizmy využívajú na syntetické účely nie viac ako 5-10% energie živín, ktoré spotrebúvajú. Zvyšok energie sa uvoľňuje do okolia najmä vo forme tepla. Termogenéza teda závisí najmä od neúplného využitia energie uvoľnenej mikroorganizmami počas ich biochemických procesov.

Fenomén termogenézy sa stáva hmatateľným iba v podmienkach sťaženého prenosu tepla. V opačnom prípade dochádza k odvodu tepla z prostredia, kde sa množia mikroorganizmy, bez citeľného zahrievania substrátu. Preto sa v praxi ohrievajú len výrazné akumulácie rôznych materiálov, teda také hmoty, v ktorých môže dochádzať k akumulácii tepla.

Pri samoohrievaní rastlinnej hmoty sa pozoruje jasná zmena mikroflóry. Najprv sa v otepľujúcej sa hmote množia mezofilné mikroorganizmy. So zvýšením teploty ich nahrádzajú termofily, ktoré prispievajú k zvýšeniu teploty organických látok, pretože majú výnimočnú rýchlosť rozmnožovania.

Silné zahriatie dostatočne suchej a poréznej hmoty môže spôsobiť jej zuhoľnatenie a vznik horľavých plynov – metánu a vodíka, ktoré sa adsorbujú na poréznom povrchu zuhoľnatených častíc rastlín, v dôsledku čoho môže dôjsť k samovznieteniu. Je veľmi pravdepodobné, že zlúčeniny železa zohrávajú úlohu katalyzátora pri vznietení. K vznieteniu dochádza len za prítomnosti vzduchu a len vtedy, ak hmota nie je dostatočne zhutnená. Pri veternom počasí sa prípady samovznietenia stávajú častejšie.

Termogenéza spôsobuje značné škody. Spôsobuje kazenie sena. Avšak pri miernom rozvoji samoohrievania môže byť termogenéza žiaduca. Napríklad „samoschnúcu“ slamu v dôsledku zahrievania lepšie konzumuje dobytok a pod. Fenomén termogenézy sa využíva na prípravu takzvaného hnedého sena. Pripravuje sa v oblastiach, kde je kvôli klimatickým podmienkam náročné sušenie sena.

Odoslanie dobrej práce do databázy znalostí je jednoduché. Použite nižšie uvedený formulár

Študenti, postgraduálni študenti, mladí vedci, ktorí pri štúdiu a práci využívajú vedomostnú základňu, vám budú veľmi vďační.

Uverejnené dňa http://www.allbest.ru/

Mikroflóra krmív a potravinárskych výrobkov

Absolvuje študent 2. ročníka

Tutunár Denis

Kŕmiť mikroflóru

Epifytická mikroflóra. Na povrchových častiach rastlín je neustále prítomná rôznorodá mikroflóra, nazývaná epifytická. Na stonkách, listoch, kvetoch, plodoch sa najčastejšie nachádzajú tieto nespórové typy mikroorganizmov: Bact, herbicola tvorí 40 % všetkej epifytnej mikroflóry, Ps. fluorescens - 40%, baktérie mliečneho kvasenia - 10%, podobné - 2%, kvasinky, plesne, celulóza, maslové, teplomilné baktérie - 8%.

Po kosení a strate odolnosti rastlín, ako aj v dôsledku mechanického poškodenia ich pletív, epifytická a predovšetkým hnilobná mikroflóra, intenzívne sa rozmnožujúca, preniká do hrúbky pletív rastlín a spôsobuje ich rozklad. Preto sú rastlinné produkty (obilie, hrubé a šťavnaté krmivá) rôznymi konzervačnými metódami chránené pred deštruktívnym pôsobením epifytnej mikroflóry.

Je známe, že v rastlinách je viazaná voda, ktorá je súčasťou ich chemických látok, a voľná – kvapká-kvapalina. Mikroorganizmy sa môžu množiť v rastlinnej hmote iba v prítomnosti voľnej vody v nej. Jedným z najbežnejších a najdostupnejších spôsobov odstraňovania voľnej vody z plodín a následne ich konzervácie je sušenie a silážovanie.

Sušenie obilia a sena zahŕňa odstránenie voľnej vody z nich. Preto sa na nich nemôžu množiť mikroorganizmy, pokiaľ sú tieto produkty suché.

V čerstvo pokosenej, nedozretej tráve obsahuje voda 70-80%, v sušenom sene len 12-16%, zvyšná vlhkosť je vo viazanom stave s organickými látkami a mikroorganizmy sa nevyužívajú. Pri sušení sena sa stráca asi 10% organickej hmoty, hlavne pri rozklade bielkovín a cukrov. Obzvlášť veľké straty živín, vitamínov a minerálnych zlúčenín sa vyskytujú v sušenom sene v pokosoch (rolách), keď často prší. Dažďom destilovaná voda ich zmyje až na 50 %. K výrazným stratám sušiny dochádza v zrne pri jeho samozohrievaní. Tento proces je spôsobený termogenézou, to znamená tvorbou tepla mikroorganizmami. Vzniká tak, že teplomilné baktérie spotrebujú pre svoj život len 5-10% energie živín, ktoré skonzumujú, a zvyšok sa uvoľní do ich prostredia – obilia, sena.

Silážovanie krmiva. Pri pestovaní krmovín (kukurica, cirok a pod.) z jedného hektára je možné získať oveľa viac kŕmnych jednotiek v zelenej hmote ako v zrne. Podľa škrobového ekvivalentu môže nutričná hodnota zelenej hmoty pri sušení klesnúť až o 50% a pri silážovaní len o 20%. Pri silážovaní sa drobné lístky rastlín s vysokou výživnou hodnotou nestrácajú a pri sušení opadávajú. Silo je možné položiť aj za premenlivého počasia. Dobrá siláž je šťavnaté, vitamínové krmivo produkujúce mlieko.

Podstata silážovania spočíva v tom, že v rozdrvenej zelenej hmote uloženej v kontajneri sa intenzívne množia mikróby kyseliny mliečnej, ktoré rozkladajú cukry za vzniku kyseliny mliečnej, ktorej sa hromadí až 1,5 – 2,5 % hmotnosti siláže. Súčasne sa množia baktérie kyseliny octovej, ktoré premieňajú alkohol a iné sacharidy na kyselinu octovú; akumuluje 0,4 až 0,6 % hmotnosti sila. Kyselina mliečna a octová sú silným jedom pre hnilobné mikróby, takže ich reprodukcia sa zastaví.

Siláž sa uchováva v dobrom stave až tri roky, pokiaľ obsahuje aspoň 2 % kyseliny mliečnej a octovej a pH je 4 – 4,2. Ak sa rozmnožovanie kyseliny mliečnej a octových baktérií oslabí, potom sa koncentrácia kyselín zníži. V tomto čase sa súčasne začínajú množiť kvasinky, plesne, maslové a hnilobné baktérie a siláž sa zhoršuje. Získanie dobrej siláže teda závisí predovšetkým od prítomnosti sacharózy v zelenej hmote a intenzity rozvoja baktérií mliečneho kvasenia.

V procese dozrievania siláže sa rozlišujú tri mikrobiologické fázy, vyznačujúce sa špecifickým druhovým zložením mikroflóry.

Prvú fázu charakterizuje rozmnožovanie zmiešanej mikroflóry s určitou prevahou hnilobných aeróbnych nespórových baktérií – Escherichia coli, Pseudomonas, mikróby mliečneho kvasenia, kvasinky. Výtrusné hnilobné a maslové baktérie sa množia pomaly a neprevažujú nad baktériami mliečneho kvasenia. Hlavným médiom pre rozvoj zmiešanej mikroflóry je v tomto štádiu rastlinná šťava, ktorá sa uvoľňuje z rastlinných pletív a vypĺňa priestor medzi rozdrvenou rastlinnou hmotou. To prispieva k vytvoreniu anaeróbnych podmienok v siláži, čo bráni rozvoju hnilobných baktérií a podporuje rozmnožovanie mikróbov kyseliny mliečnej. Prvá fáza s hustou znáškou siláže, teda za anaeróbnych podmienok, trvá len 1--3 dni, pri voľnej znáške v aeróbnych podmienkach je dlhšia a trvá 1--2 týždne. Počas tejto doby sa silo zahrieva v dôsledku intenzívnych aeróbnych mikrobiologických procesov. Druhá fáza dozrievania siláže je charakterizovaná rýchlym rozmnožovaním mikróbov mliečneho kvasenia a najskôr sa vyvinú prevažne kokálne formy, ktoré sú potom nahradené baktériami mliečneho kvasenia.

Nahromadením kyseliny mliečnej sa zastaví vývoj všetkých hnilobných a maslových mikroorganizmov, pričom ich vegetatívne formy odumierajú a ostávajú len spóronosné (vo forme spór). Pri plnom dodržaní technológie znášky siláže v tejto fáze dochádza k množeniu homofermentačných baktérií mliečneho kvasenia, ktoré z cukrov tvoria len kyselinu mliečnu. V prípade porušenia technológie kladenia sila, keď v ňom. obsiahnutý vzduch, vzniká mikroflóra heterofermentatívnej fermentácie, v dôsledku čoho vznikajú nežiaduce prchavé kyseliny - maslová, octová a pod. Trvanie druhej fázy je od dvoch týždňov do troch mesiacov.

Tretia fáza je charakterizovaná postupným odumieraním mikróbov kyseliny mliečnej v siláži v dôsledku vysokej koncentrácie kyseliny mliečnej (2,5 %). V tomto čase je dozrievanie siláže ukončené, kyslosť silážnej hmoty, ktorá klesá na pH 4,2 - 4,5, sa považuje za podmienený ukazovateľ jej vhodnosti na kŕmenie (obr. 37). V aeróbnych podmienkach sa začnú množiť plesne a kvasinky, ktoré odbúravajú kyselinu mliečnu, využívajú to maslové a hnilobné baktérie klíčiace zo spór, následkom čoho siláž plesnivie a hnije.

Defekty siláže mikrobiálneho pôvodu. Ak nie sú dodržané náležité podmienky pre uloženie a skladovanie sila, vyskytujú sa v ňom určité chyby.

Hnitie siláže, sprevádzané výrazným samozahrievaním, sa prejavuje voľným ukladaním a nedostatočným zhutnením. Rýchly rozvoj hnilobných a termofilných mikróbov uľahčuje vzduch v sile. V dôsledku rozkladu bielkovín získava siláž hnilobný, čpavkový zápach a stáva sa nevhodnou na kŕmenie. Hniloba siláže nastáva v prvej mikrobiologickej fáze, kedy sa oneskoruje vývoj mikróbov kyseliny mliečnej a hromadenie kyseliny mliečnej, ktorá potláča hnilobné baktérie. Na zastavenie vývoja posledne menovaného je potrebné znížiť pH v siláži na 4,2-4,5. Hnitie siláže je spôsobené Er. herbicola, E. coli, Ps. aerogény. P. vulgaris, B. subtilis, Ps. fluorescencie, ako aj huby.

Žluknutie siláže je spôsobené akumuláciou kyseliny maslovej v nej, ktorá má ostrú horkú chuť a nepríjemný zápach. V dobrej siláži chýba kyselina maslová, v siláži strednej kvality do 0,2 %, v siláži nevhodnej na skrmovanie do 1 %.

Pôvodcovia maslovej fermentácie sú schopné premieňať mliečnu na kyselinu maslovú, ako aj spôsobovať hnilobný rozklad bielkovín, čím sa zhoršuje ich negatívny vplyv na kvalitu siláže. Maslová fermentácia sa prejavuje pomalým vývojom baktérií mliečneho kvasenia a nedostatočnou akumuláciou kyseliny mliečnej, pri pH nad 4,7. Pri rýchlej akumulácii kyseliny mliečnej v siláži do 2% a pH 4--4,2 nedochádza k maslovej fermentácii.

Hlavnými pôvodcami maslovej fermentácie v siláži: Ps. fluo-rescens, Cl. pasteurianum, Cl. felsineum.

Peroxidácia siláže sa pozoruje pri intenzívnej reprodukcii kyseliny octovej, ako aj v nej hnilobných baktérií, ktoré sú schopné produkovať kyselinu octovú. Baktérie octového kvasenia sa množia obzvlášť intenzívne v prítomnosti etylalkoholu v siláži, ktorý je akumulovaný kvasinkami alkoholového kvasenia. Kvasinky a baktérie kyseliny octovej sú aeróbne, preto je za prítomnosti vzduchu v sile zaznamenaný významný obsah kyseliny octovej v siláži a následne aj jej peroxidácia.

K plesneniu siláže dochádza vtedy, keď je v sile vzduch, čo podporuje intenzívny rozvoj plesní a kvasiniek. Tieto mikroorganizmy sa vždy nachádzajú na rastlinách, preto za priaznivých podmienok začína ich rýchla reprodukcia.

Negatívnu úlohu môže zohrať aj rizosférická a epifytická mikroflóra. Hnilobou bývajú často napadnuté okopaniny (čierna - Alternaria radicina, sivá - Botrutus cinirea, zemiak - Phitophtora infenstans). Nadmerná aktivita pôvodcov maslovej fermentácie vedie k znehodnoteniu siláže. Námel (claviceps purpurae), ktorý spôsobuje ochorenie ergotizmus, sa rozmnožuje na vegetatívnych rastlinách. Huby spôsobujú toxikózu. Pôvodca botulizmu (Cl. botulinum), ktorý sa dostáva do krmiva s pôdou a výkalmi, spôsobuje ťažkú toxikózu, často smrteľnú. Mnohé huby (Aspergillus, Penicillum, Mucor, Fusarium, Stachybotrus) osídľujú potravu, za priaznivých podmienok sa množia a spôsobujú u zvierat akútnu alebo chronickú toxikózu, často sprevádzanú nešpecifickými symptómami.

Mikrobiologické prípravky používané v strave zvierat a vtákov. Enzýmy zlepšujú vstrebávanie krmiva. Vitamíny a aminokyseliny sa získavajú na mikrobiologickej báze. Je možné použiť bakteriálny proteín. Kŕmne kvasnice sú dobrým proteínovo-vitamínovým krmivom. Kvasinky obsahujú ľahko stráviteľnú bielkovinu, provitamín D (pro-gosterol), ako aj vitamíny A, B, E. Kvasinky sa veľmi rýchlo rozmnožujú, preto je možné v priemyselných podmienkach získať veľké množstvo kvasnicovej hmoty pri ich pestovaní na melasa alebo sýtená vláknina. V súčasnosti sa u nás vo veľkom pripravuje suché kŕmne kvasnice. Na ich výrobu sa používa kultúra kŕmnych kvasiniek.

Mikroflóra potravinárskych výrobkov počas skladovania v chladničke

Mikroflóra surových potravinových produktov rastlinného a živočíšneho pôvodu je veľmi rôznorodá. Medzi mikroorganizmy, ktoré tvoria mikroflóru produktov, patria baktérie, kvasinky, plesne, prvoky (prvoky) a niektoré riasy. Mikroorganizmy sú v prírode rozšírené pre ich ľahkú prispôsobivosť teplu, chladu, nedostatku vlahy, ako aj pre ich vysokú odolnosť a rýchle rozmnožovanie. silo mikrobiálna mikroflóra pleseň

Vývoj mikrobiologických procesov v potravinárskych výrobkoch môže viesť k poklesu nutričná hodnota a prudko zhoršiť organoleptické vlastnosti potravinárskych výrobkov, spôsobiť tvorbu látok škodlivých pre výrobky. Preto je jednou z úloh potravinárskeho priemyslu obmedziť škodlivé účinky mikroorganizmov na produkty. Existujú však určité mikroorganizmy, ktorých prítomnosť v potravinách im dáva novú chuť. Metóda nahradenia nežiaducej mikroflóry mikroflórou s požadovanými vlastnosťami sa používa pri výrobe kefírov, kyslého mlieka, acidofilov, syrov, kyslej kapusty a pod.

Pre vývoj mikroorganizmov je potrebná prítomnosť vody vo forme, ktorá je im prístupná. Potrebu mikroorganizmov po vode možno kvantitatívne vyjadriť vo forme aktivity vody, ktorá závisí od koncentrácie rozpustených látok a stupňa ich disociácie.

Rozvoj mikroflóry s poklesom teploty je výrazne inhibovaný a čím viac, tým viac je teplota bližšie k bodu mrazu tkanivového moku produktu. Účinok zníženia teploty na mikrobiálnu bunku je spôsobený porušením komplexného vzťahu metabolických reakcií v dôsledku rôznych úrovní zmien ich rýchlosti a poškodenia molekulárneho mechanizmu aktívneho prenosu rozpustných látok cez bunkovú membránu. . Spolu s tým dochádza k zmene kvalitatívneho zloženia mikroorganizmov. Niektoré skupiny z nich sa rozmnožujú a nízke teploty spôsobujúce infekciu ovocia a zeleniny zranených počas zberu a prepravy. Infekcia sa potom rozšíri na zdravé, nepoškodené ovocie a zeleninu.

Vo vzťahu k teplote sa všetky mikroorganizmy delia do troch skupín: TERMOFILY (55-75 o C); MEZOFILI (25-37 o C); PSYCHROFILI (0-15 o C).

Pre chladiacu techniku majú veľký význam psychrofilné mikroorganizmy v potravinárskych výrobkoch. Nachádzajú sa v pôde, vode, vzduchu, majú schopnosť osevných technologických zariadení, nástrojov, nádob, priamo potravinárskych výrobkov. Aktívne sa chovajú na potravinách s nízkou kyslosťou - mäso, ryby, mlieko a zelenina.

Zmrazovanie potravín je sprevádzané poklesom počtu mikroorganizmov a ich aktivity. V počiatočnom období mrazu, keď sa väčšina vody mení na ľad, dochádza k prudkému poklesu počtu buniek mikroorganizmov (zóna A). Nasleduje spomalenie rozmnožovania mikroorganizmov (zóna B). Potom sa proces stabilizuje a zostane určité množstvo buniek odolných mikroorganizmov (zóna C).

K úhynu mikroorganizmov pri mrazení s najväčšou intenzitou dochádza pri teplotách od -5 do -10 o C. Množstvo kvasiniek a plesní je schopných životne dôležitých procesov až do teploty -10 - -12 o C.

Hostené na Allbest.ru

...

Podobné dokumenty

Prehľad spôsobov rozmnožovania baktérií, aktinomycét, kvasiniek, plesní. Vplyv žiarivej energie a antiseptík na vývoj mikroorganizmov. Úloha potravinárskych výrobkov pri výskyte alimentárnych chorôb, zdroje infekcie, preventívne opatrenia.

test, pridané 24.01.2012

Hlavné skupiny mikroorganizmov používaných v potravinárskom priemysle: baktérie, kvasinky a plesne, ich charakteristika. Alkoholové kvasenie, rozklad cukru na alkohol a oxid uhličitý. Proces mliečnej, propiónovej a maslovej fermentácie.

semestrálna práca, pridaná 12.07.2013

Opis štruktúry vody v sladkovodných útvaroch a spodných kalových ložiskách. Charakteristika pôdy ako biotopu pre mikroorganizmy. Štúdium vplyvu rastlinných druhov a veku na mikroflóru rizosféry. Zváženie mikrobiálnej populácie pôd rôznych typov.

semestrálna práca, pridaná 4.1.2012

Hlavné vlastnosti mlieka a príčiny patogénnej mikroflóry. Podstata biochemických procesov fermentácie a rozkladu. Fázy zmien v mikroflóre čerstvého mlieka. Charakteristika fermentovaných mliečnych výrobkov, vlastnosti ich použitia ľuďmi.

semestrálna práca, pridaná 4.12.2012

Typické fermentačné procesy. Stručný popis mikroorganizmov - pôvodcov. Mikroflóra ovocia a zeleniny, výrobky z obilnej múky, sterilizácia konzerv. Hlavné typy mikrobiologického znehodnotenia. Pojem a metódy dezinfekcie. Sanitárny dozor.

test, pridaný 26.10.2010

Funkcie mikroorganizmov: rozklad rastlinných a živočíšnych zvyškov, využitie v technológiách výroby potravín a biologicky aktívne zlúčeniny. Typy anaeróbnych procesov: alkoholová, mliečna, propiónová a olejová fermentácia.

abstrakt, pridaný 20.01.2011

História vývoja mikrobiológie, úlohy a prepojenie s inými vedami. Úloha mikróbov v národnom hospodárstve a patológia zvierat. Štúdium plesní a kvasiniek. Mikroflóra zvierat, pôdy a krmiva. Pojem a význam antibiotík, sterilizácia a pasterizácia.

cheat sheet, pridaný 05.04.2014

všeobecné informácie o baktériách kyseliny propiónovej. Hlavné produkty fermentácie kyseliny propiónovej, chémia, vlastnosti. Závislosť pomeru produktov fermentácie od stupňa oxidácie zdroja uhlíka. Využitie baktérií kyseliny propiónovej v priemysle.

abstrakt, pridaný 01.06.2010

Štúdium hlavných typov mikroorganizmov: baktérií, húb a rias. Analýza podmienok nevyhnutných pre rast mikroorganizmov. Mechanizmus tvorby mikrobiologických usadenín. Štúdium mikrobiologických testovacích metód a monitorovacích zariadení.

prezentácia, pridané 23.10.2013

Vlastnosti prokaryotických mikroorganizmov. Metódy stanovenia motility baktérií. Účasť mikroorganizmov na kolobehu dusíka v prírode. Normálna a abnormálna mikroflóra mlieka. Kultivácia anaeróbnych mikroorganizmov v laboratóriu.

"T. V. Soljanik, M. A. Glaskovič

-- [ Strana 1 ] --

MINISTERSTVO POĽNOHOSPODÁRSTVA

A POTRAVINY BIELORUSKEJ REPUBLIKY

HLAVNÉ ODDELENIE ŠKOLSTVA, VEDY A PERSONÁLU

vzdelávacia inštitúcia

„BIELORUSKÝ ŠTÁT

POĽNOHOSPODÁRSKA AKADÉMIA“

T. V. Soljanik, M. A. Glaskovich

MIKROBIOLÓGIA

KRMIVÁ MIKROBIOLÓGIA

ŽIVOČÍŠNE A ZELENINOVÉ

ORIGIN

Odporúčané vzdelávacím a metodickým združením pre vzdelávanie v kraji poľnohospodárstvo ako kurz prednášok pre študentov vysokých škôl študujúcich v odbore 1-74 03 01 Zootechnika Gorki BGSHA UDC 636.085:579.67 (075.8) BBK 36-1Ya73 C60 Rada BSAA 3.12.2014 (3Minus)

kandidát poľnohospodárskych vied, docent T. V. Soljanik;

Kandidát poľnohospodárskych vied, docent M. A. Glaskovich

Recenzenti:

kandidát veterinárnych vied, docent Katedry mikrobiológie a virológie EE "VGAVM" P. P. Krasochko;

Kandidát poľnohospodárskych vied, docent Katedry chovu ošípaných a malých zvierat EE "BSAA" N. M. Bylitsky Solyanik, T. V.

С60 Mikrobiológia. Mikrobiológia krmív živočíšneho a rastlinného pôvodu: kurz prednášok / T. V. Solyanik, M. A. Glaskovich. - Gorki: BSHA, 2014. - 76 s. : chorý.

ISBN 978-985-467-536-7.

V súlade s programom disciplíny bol kurz prednášok zostavený pre študentov vysokých škôl. V prednáškach sa podrobne rozoberalo chemické zloženie krmiva, charakteristika mikroorganizmov, rozsah strát v konzervovaných krmivách spôsobených činnosťou mikroorganizmov. Prístupnou formou sú prezentované mikrobiologické analýzy krmív, mikroflóra silážovanej a zelenej hmoty, aeróbny rozklad krmív, metódy štúdia patogénov sekundárnej fermentácie.

Pre študentov vysokých škôl študujúcich v odbore 1-74 03 01 Zootechnika.

MDT 636.085:579.67(075.8) LBC 36-1Ya73 ISBN 978-985-467-536-7 © Bieloruská štátna poľnohospodárska akadémia, 2014

ÚVOD

Krmivo v chove zvierat alebo hydiny tvorí asi 70 % nákladov na hotové výrobky, takže každý majiteľ, ktorý má záujem o vysoko výnosný chov, sa stará predovšetkým o ne. Nikomu nie je cudzie, že krmoviny treba nielen včas vypestovať a zozbierať z poľa, ale aj správne pripraviť.

Seno (slama) sa skladuje v stohoch, balíkoch alebo skladoch sena. Niektoré šťavnaté krmivá (koreňoviny) vyžadujú teplé skladovanie alebo dobre izolované hromádky (hromady). Koncentrované krmivá vyžadujú zmesi alebo elevátory. Najťažším problémom je príprava a skladovanie šťavnatého krmiva – siláže a senáže.

Treba si uvedomiť, že tieto dva druhy krmív tvoria cez 50 % nutričnej hodnoty zimnej stravy prežúvavcov. A v intenzívnom chove zvierat sa pri prechode na súčasné kŕmenie zvierat rovnakým typom stravy stávajú tieto krmivá celoročne hlavnou zložkou stravy. Preto kvalita siláže a senáže je kvalita a účinnosť kŕmenia zvierat vôbec.

Konzerváciu krmovín v súčasnosti sprevádzajú veľké straty. Ak sa siláž vykonáva správne, napríklad v horizontálnych silách, straty sú v priemere asi 20 %. Pri nekvalifikovanej práci ich výrazne pribúda. Na základe početných štúdií možno konštatovať, že množstvo strát spôsobených činnosťou kŕmnych mikroorganizmov je často podceňované. Pri zostavovaní bilancie krmiva sa predpokladajú len „nevyhnutné“ straty v dôsledku „odpadu“. Treba si však uvedomiť, že siláž, ktorá bola pod vrstvou znehodnotená v dôsledku sekundárnej fermentácie (vrchná a bočná vrstva), sa vyznačuje vysokým pH a je nevhodná na kŕmenie zvierat. Senáž, ktorá sa v dôsledku aeróbnych procesov samozahrieva, stráca svoju nutričnú hodnotu o polovicu. Plesnivé seno, obilie, kyslá siláž sú príčinou mnohých chorôb hospodárskych zvierat.

Aj za priaznivých podmienok prirodzenej fermentácie sa pri konzervácii zelených rastlín stráca veľa živín. Odstránenie týchto strát sa rovná zvýšeniu úrody krmovín o 20–25 %. Okrem toho, bežný konvenčný spôsob silážovania nie je vhodný pre trávy s vysokým obsahom bielkovín (viac ako 17 % v sušine).

Podľa moderných koncepcií je úspešnosť konzervácie určená celkovým účinkom hlavných konzervačných faktorov: aktívnej kyslosti, toxického účinku molekuly kyseliny mliečnej a špecifických antibiotických látok baktérií mliečneho kvasenia. Baktérie mliečneho kvasenia sú užitočné aj v tom, že sú producentmi okrem kyseliny mliečnej a antibiotík aj ďalších biologicky aktívnych látok (vitamínov, aminokyselín atď.). To všetko vedie k hľadaniu nových ekologických biologických produktov na báze baktérií mliečneho kvasenia, ktoré regulujú a usmerňujú mikrobiologický proces na ceste požadovanej homofermentatívnej mliečnej fermentácie.

Produkčne hodnotné kmene baktérií mliečneho kvasenia sa musia vedieť aktívne množiť, vyznačovať sa vysokou energiou tvorby kyseliny, teda vytvárať veľké množstvo kyseliny mliečnej, postačujúce na rýchle stabilné zvýšenie kyslosti konzervovaného krmiva.

Znalosť fyziologických a biochemických charakteristík jednotlivých skupín mikroorganizmov nachádzajúcich sa v konzervovaných krmivách a faktorov, ktoré obmedzujú alebo stimulujú ich rozvoj, je nevyhnutná pre elimináciu chýb pri príprave, skladovaní a kŕmení konzervami.

1. ZOZNÁMENIE SA S VLASTNOSTIMI CHEMIKÁLIÍ

ZLOŽENIE A VÝŽIVNÉ KRMIVO

– – –

Seno - sušené stonky a listy bylinné rastliny, kosené na zeleno, kým nedosiahnu úplnú prirodzenú zrelosť. Používa sa ako potravina pre hospodárske zvieratá v oblastiach, kde klimatické podmienky neumožňujú celoročné používanie čerstvého krmiva. Kosenie sena sa nazýva senosectvo.

Seno je jedným z hlavných krmív pre dobytok, ovce, kone v období ustajnenia. Kvalitné seno slúži ako zdroj bielkovín, vlákniny, cukrov, minerálnych látok, vitamínov D a skupiny B. Na zber sena sú vhodné plodiny viacročných a jednoročných strukovín a obilných tráv, ich zmesy, ako aj trávne porasty prírodných krmovín. použité.

Výživová hodnota sena do značnej miery závisí od jeho kvality. Hlavnou podmienkou na získanie kvalitného sena je včasné kosenie tráv. Spôsoby a dĺžka sušenia tráv majú významný vplyv na kvalitu sena. Sypané a lisované seno sa zberá metódou poľného sušenia. Použitie sploštenia bylín a sušenie sušených bylín metódou aktívneho vetrania umožňuje skrátiť čas sušenia byliniek. Aktívna ventilácia (pri zbere voľne drveného a nedrveného, ako aj lisovaného sena) umožňuje zvýšiť celkový zber živín o 10–15 %, zvýšiť nutričnú hodnotu sena o 20 % a znížiť straty karoténu 2-krát.

Používa sa konzervácia vlhkého sena tekutým amoniakom, čo umožňuje zvýšiť nutričnú hodnotu sena o 10–25 %.

Všeobecné hodnotenie sena a jeho klasifikácia sa vykonáva v súlade s GOST 4808–87. Za základ pre všeobecné hodnotenie sena sa berú tieto ukazovatele: vegetačná fáza tráv v čase zberu, farba, vôňa, obsah sušiny v sene, škodlivé a jedovaté rastliny, minerálne nečistoty. Hodnotenie kvality sena sa stanovuje na základe organoleptických ukazovateľov a laboratórnych testov.

Organoleptické ukazovatele určujú všeobecný stav sena: vzhľad, zápach, známky poškodenia, ktoré charakterizujú kvalitu jeho čistenia a skladovania. Kvalita sena musí spĺňať požiadavky GOST 4808–87. Podľa GOST sa robí všeobecné hodnotenie sena a jeho klasifikácia.

V závislosti od botanického zloženia sa seno delí na tieto typy:

1) semenné strukoviny (strukoviny viac ako 60 %);

2) obilniny so semenami (obilniny viac ako 60 % a strukoviny najmenej 20 %);

3) semenné strukoviny a obilniny (strukoviny od 20 do 60 %);

4) prírodné krmoviny (obilniny, strukoviny atď.).

Na seno, siate trávy a trávy z prírodných krmovín sa musia kosiť:

1) strukoviny – vo fáze pučania, najneskôr však do fázy plného kvitnutia;

2) obilniny - vo fáze hlavičky, najneskôr však na začiatku kvitnutia.

Farba sena by mala byť:

1) strukovina so semenami (strukovina-obilnina) - od zelenej a zelenožltej po svetlohnedú;

2) semenné obilniny a seno z prírodných kŕmnych senníkov - od zelenej po žltozelenú.

Seno vyrobené zo semien tráv a tráv z prírodných krmovín by nemalo mať zatuchnutý, plesnivý a hnilobný zápach.

V sene zo siatych tráv a tráv z prírodných krmovín by hmotnostný podiel sušiny mal byť najmenej 83 % (vlhkosť - nie viac ako 17 %).

Seno zo semenných tráv a tráv prírodných pozemkov je rozdelené do troch tried v závislosti od obsahu hrubých bielkovín a metabolickej energie alebo RFU (tabuľka 1).

Škodlivé a jedovaté rastliny nie sú povolené do sena vyrobeného zo semien. Obsah škodlivých a jedovatých rastlín nie je povolený v sene prírodných krmovín (pre 1. triedu - najviac 0,5%, pre 2. a 3. triedu - najviac 1%).

T a b l e 1. Požiadavky na seno (GOST 4808–87)

– – –

Zlepšenie kvality krmiva je jednou z najreálnejších a najhmatateľnejších rezerv pri vytváraní pevnej krmivovej základne pre hospodárske zvieratá v krajine. Problém zlepšovania kvality krmiva je zložitý a zahŕňa získavanie surovín s vysokým obsahom živín a šetrných k životnému prostrediu.

Plné uspokojenie potreby krmiva je možné dosiahnuť nielen zvýšením úrody krmovín, ale aj zlepšením kvality, znížením strát živín krmiva v procese zberu, spracovania a skladovania. Úspech podnikania do značnej miery závisí od výberu najefektívnejšieho spôsobu ochrany zelených rastlín.

AT posledné roky sa rozšíril taký spôsob konzervácie, akým je senáž, ktorý umožňuje konzervovať krmivo s minimálnou stratou živín, najmä sacharidovej časti. Správne pripravená senáž je potrava z rastlín zozbieraných v raných fázach vegetácie (hlavne strukovín), vysušená na vlhkosť 45–55 % a skladovaná v anaeróbnych podmienkach (bez prístupu vzduchu). Pri dodržaní základných technologických požiadaviek pri kladení a skladovaní senáže sa spravidla získava krmivo Vysoká kvalita svojím charakteristickým chemickým zložením a nutričnou hodnotou.

Technológia prípravy senáže pozostáva z nasledujúcich postupne vykonávaných operácií: kosenie a sploštenie tráv (strukovín); vädnutie a hrabanie do roliek; výber; brúsenie a nakladanie do vozidiel; preprava a vykládka v sklade;

starostlivé podbíjanie (v zákopoch) a spoľahlivý úkryt.

Senáž sa v závislosti od botanického zloženia a obsahu vlhkosti rastlín rozdrvených do 3 cm delí na tieto typy:

1) senáž zo strukovín a obilno-strukovinových tráv, vysušená na vlhkosť 45 – 55 %;

2) senáž z obilnín a obilno-strukovinových tráv, vysušená na vlhkosť 40 – 55 %.

Senáž je rozdelená do troch tried v súlade s požiadavkami GOST 23637–90 (tabuľka 2).

Rastliny na výrobu senáže by sa mali kosiť v nasledujúcich fázach vývoja:

Trvanlivé bôbovité trávy - vo fáze pučania, najneskôr však na začiatku kvitnutia;

Viacročné obilniny - na konci fázy vzchádzania do trubice pred fázou začiatku klasenia;

Viacročné trávne zmesi sa režú do fáz vyššie uvedenej prevažujúcej zložky.

– – –

Poznámka: Normy sa stanovujú s prihliadnutím na to, že triedy senáže sa určujú najskôr 30 dní po hermetickom úkryte hmoty položenej v priekope alebo veži a najneskôr 15 dní pred začiatkom podávania hotovej senáže do zvieratá .

Jednoročné strukoviny, strukoviny a ich zmesi sa kosia najskôr po vytvorení fazule v dvoch alebo troch nižších radoch. Senáž by mala mať charakteristickú vôňu, bez slizkej konzistencie.

Pleseň nie je povolená. Hmotnostný podiel popola nerozpustného v kyseline chlorovodíkovej by nemal presiahnuť 3 %.

1.3. Chemické zloženie a nutričná hodnota siláže a siláže Siláž je krmivo vyrobené z čerstvo narezanej alebo vysušenej hmoty, konzervovanej v anaeróbnych podmienkach organickými kyselinami alebo konzervačnými látkami vznikajúcimi pri tomto procese.

Silážovanie je fermentácia šťavnatej hmoty rastlín organickými kyselinami, najmä mliečnymi. Vlhkosť sila by mala byť 65-75%. Aby sa zabránilo hnilobe krmiva, vzduch sa z položenej hmoty odstraňuje opatrným zhutňovaním.

Nie všetky rastliny silážujú rovnako dobre.

Medzi ľahko silážovateľné patrí: kukurica zozbieraná v štádiu zrelosti mliečneho vosku; cirok - v období voskovej zrelosti zrna;

slnečnica, zbieraná počas kvitnutia košíčkov z tretej časti rastliny; obilné trávy kosené na začiatku klasenia; fazuľové a obilninové zmesi, stolová a kŕmna kapusta, repka, repa, tekvica, mrkva, kŕmne melóny, zvyšky lúčnych tráv; trstina a trstina zberaná pred kvitnutím; vrcholy repy a mrkvy.

Rastliny, ktoré sa ťažko zhadzujú: ďatelina, lucerna, ďatelina, vičenec, vika, ostrica, trstina a trstina, zberané v období kvitnutia. Tieto rastliny je najlepšie vysádzať v zmesi s ľahko silážovanými rastlinami v pomere 1:1.

Siláž je druh siláže vyrobený z bylín sušených na obsah vlhkosti 60,1–70,0 %. Silážou sú aj potraviny pripravené rovnomerným zmiešaním a sploštením nasekaných čerstvo nakrájaných strukovín s obilninami vysušenými na vlhkosť 40–45 %, v pomere 1:1–1,3:1,0. Z hľadiska obsahu sušiny (30,0–39,9 %) zaujíma siláž medzipolohu medzi čerstvo pokosenou silážou a senážou.

Siláž sa v závislosti od botanického zloženia rastlín a technológie prípravy delí na tieto druhy: siláž z kukurice, siláž z jednoročných a viacročných rastlín a siláž.

Siláž môže byť pripravená s alebo bez látok obohacujúcich dusík, s alebo bez konzervačných látok a prísad absorbujúcich vlhkosť (slama, plevy atď.), s alebo bez sušenia zelenej hmoty.

Krmoviny určené na prípravu siláže by sa mali zbierať počas nasledujúcich vegetačných období:

Kukurica - vo fáze voskovej a mliečno-voskovej zrelosti zrna;

je povolené zberať kukuricu v skorších fázach v opakovaných plodinách a v oblastiach, kde táto plodina v dôsledku klimatických podmienok nemôže dosiahnuť tieto fázy;

Slnečnica - vo fáze začiatku kvitnutia;

Lupina - vo fáze lesklej fazule;

Vytrvalé bôbovité trávy - vo fáze pučania - začiatok kvitnutia;

Obilné trávy - na konci fázy vstupu do trubice - začiatok ražby (panicleing);

Trávne zmesi strukovín trvácich a obilných tráv - v uvedených fázach vegetácie prevládajúca zložka;

Jednoročné strukovinové zmesi - vo fáze voskovej zrelosti semien v dvoch alebo troch nižších radoch strukovín;

Jednoročné obilninové a obilninovo-fazuľové zmesi - vo fáze mliečnej zrelosti zrna.

Siláž by mala mať príjemnú ovocnú vôňu nakladanej zeleniny, farbu charakteristickú pre surovinu a textúru bez hlienu. Pleseň nie je povolená.

Maximálny povolený obsah v sile: dusičnany - 500 mg / kg, dusitany - 10 mg / kg.

Maximálne prípustné hladiny ťažkých kovov, mg/kg: ortuť - 0,06; kadmium - 0,3; olovo - 5,0; meď - 30,0; zinok - 50,0; železo - 100,0; nikel - 3,0; fluór - 20,0; kobalt - 1,0; molybdén - 2,0; jód - 2,0.

Zvyškové množstvo pesticídov by nemalo presiahnuť povolené úrovne.

Siláž z krmovín je rozdelená do štyroch tried: najvyššia, prvá, druhá a tretia. Kukuričná siláž musí spĺňať požiadavky uvedené v tabuľke. 3.

Siláž z jednoročných a viacročných čerstvo narezaných a sušených rastlín musí spĺňať požiadavky uvedené v tabuľke. 4 a 5.

Kvalita siláže z krmovín sa hodnotí najskôr 30 dní po hermetickom úkryte hmoty umiestnenej v sklade a najneskôr 15 dní pred začiatkom prikrmovania zvierat.

– – –

* Zóny zahŕňajú regióny: prvý - Brest a Gomel; v druhej (centrálnej) - Grodno, Minsk a Mogilev;

v treťom (severnom) - Vitebsk.

Tabuľka 4. Charakteristika tried kvality siláže z jednoročných a viacročných čerstvo pokosených a sušených rastlín

– – –

Poznámky: 1. V sile konzervovanom pyrosiričitanom sodným sa pH neurčuje.

2. V siláži konzervovanej pyrosiričitanom sodným, kyselinou propiónovou a jej zmesami s inými kyselinami sa hmotnostný podiel kyseliny maslovej nestanovuje.

3. Slamená siláž nie je hodnotená najvyššou triedou.

– – –

2. STRUČNÝ POPIS

KRMNÉ MIKROORGANIZMY

2.1. Epifytická mikroflóra, jej zloženie a vlastnosti Epifytická mikroflóra sú mikroorganizmy nachádzajúce sa na povrchu rastúcich rastlín. Jeho kvantitatívne a kvalitatívne (druhové) zloženie sa značne líši a závisí od ročného obdobia, lokality, druhu a štádia vývoja rastlín, stupňa ich znečistenia a mnohých ďalších podmienok. Na 1 g čerstvej hmoty bol teda nasledujúci počet mikroorganizmov: čerstvá tráva - 16 000, lucerna - 1 600 000, kukurica - 17 260 000.

Pestrá mikroflóra obsahuje len relatívne malé množstvo baktérií mliečneho kvasenia (tabuľka 6).

Tabuľka 6. Kvantitatívne a kvalitatívne zloženie mikroorganizmov, bunky/g

– – –

V 1 g lucerny bolo asi 1,6 milióna mikroorganizmov, no medzi nimi len 10 baktérií mliečneho kvasenia. Na 1 žiaduci mikroorganizmus teda pripadalo 160 000 nežiaducich. Výnimkou je kukurica. Na 1 g čerstvej hmotnosti tejto rastliny pripadalo viac ako 100 000 baktérií mliečneho kvasenia. Na dobrej siláži kukurice sa zrejme podieľa jednak priaznivý pomer živín a jednak väčší počet baktérií mliečneho kvasenia. Rovnaké faktory rozhodujú o dobrej siláži aj iných krmív s vysokým obsahom cukru (repné vršky, proso atď.).

Na rastlinách sa teda nachádza obrovské množstvo rôznych mikroorganizmov, avšak toto číslo je nepatrné v porovnaní s hustotou mikroorganizmov po znáške a pri skladovaní v konkrétnom sklade.

2.2. Mikroflóra sena a vlhkého zrna

Najdôležitejšou úlohou výroby krmiva je udržanie dobrej kvality krmiva. Príčin straty živín, poklesu chuťových a technologických vlastností krmiva je viacero.

Najbežnejším spôsobom konzervovania zelenej hmoty a iného krmiva je sušenie. Sušenie sena sa vykonáva rôznymi spôsobmi - v pokosoch, pokosoch, nárazoch, na vešiakoch atď. Aj v suchom počasí a rýchlom sušení je nevyhnutná určitá strata živín v krmive, pretože v rastline pokračuje dýchanie a iné enzymatické procesy. omša. V prípade viac-menej zdĺhavého sušenia sa úloha uvedených procesov výrazne zvyšuje, čo zase vedie k zvýšeniu strát, ktoré sú vo veľkej miere spojené s množením mikroorganizmov na vlhkej rastlinnej hmote. Na obmedzenie straty živín zvyknú využívať umelé sušenie sena pomocou núteného vetrania atmosférickým alebo ohriatym vzduchom.

Pri sušení krmiva sa počet životne dôležitých mikroorganizmov v nich postupne znižuje. Napriek tomu sa na kvalitných potravinách rastlinného pôvodu vždy nájde väčší či menší počet mikrobiálnych buniek charakteristických pre epifytickú mikroflóru, ako aj iné mikroorganizmy, ktoré sa sem dostávajú z pôdy a vzduchu. Sú v anabiotickom stave.

Mikroorganizmy nevyužívajú na syntetické účely viac ako 5–10 % energie živín, ktoré spotrebúvajú. Zvyšok energie sa uvoľňuje do okolia najmä vo forme tepla. Termogenéza teda závisí najmä od neúplného využitia energie uvoľnenej mikroorganizmami počas ich biochemických procesov.

Fenomén termogenézy sa stáva hmatateľným iba v podmienkach ťažkého prenosu tepla. V opačnom prípade dochádza k odvodu tepla z prostredia, v ktorom sa množia mikroorganizmy, bez citeľného zahrievania substrátu. Preto sa v praxi zahrieva len výrazné nahromadenie rôznych materiálov, teda také hmoty, v ktorých môže dochádzať k akumulácii tepla.

Pri samoohrievaní rastlinnej hmoty sa pozoruje výrazná zmena mikroflóry. Najprv sa v otepľujúcej sa hmote množia mezofilné mikroorganizmy. So zvýšením teploty ich nahrádzajú termofily, ktoré prispievajú k zvýšeniu teploty organických látok, pretože majú výnimočnú rýchlosť rozmnožovania.

Silné zahriatie dostatočne suchej a poréznej hmoty môže spôsobiť jej zuhoľnatenie a vznik horľavých plynov, ako je metán a vodík, ktoré sa adsorbujú na poréznom povrchu zuhoľnatených častíc rastlín, v dôsledku čoho môže dôjsť k samovznieteniu. Je veľmi pravdepodobné, že zlúčeniny železa zohrávajú úlohu katalyzátora pri vznietení. K vznieteniu dochádza len za prítomnosti vzduchu a len vtedy, ak hmota nie je dostatočne zhutnená. Pri veternom počasí sa prípady samovznietenia stávajú častejšie.

V sušenom krmive sú mikroorganizmy v anabiotickom stave. Keď sa krmivo navlhčí, začnú sa množiť a spôsobujú kazenie.

Teoreticky je produkcia sena spojená so sušením plodiny s počiatočným obsahom vody 65-75% na obsah vody 10-16%, pri ktorom zaniká všetka biochemická a mikrobiologická aktivita. V praxi sa seno nesuší na taký nízky obsah vody a skladovanie sena sa v skutočnosti považuje za bezpečné, keď sa priemerný obsah vody zníži na 20 %. To je dostatočne vysoká vlhkosť na to, aby sa pleseň mohla objaviť, pokiaľ počas skladovania nedôjde k ďalšej strate vody.

Vo všetkých prípadoch sa počas prvých 2–3 dní skladovania pozoruje prvý teplotný vrchol, po ktorom nasleduje druhý, vyšší vrchol.

Je to druhý vrchol, ktorý je spôsobený dýchaním rýchlo sa rozvíjajúcich húb. Čím vyšší je obsah vody na úrovni 20%, tým väčšie je riziko plesní, zvýšené straty sušiny. Ak sa teda voľné balíky sena skladujú pri obsahu vody 35-40%, strata sušiny bude asi 15-20% a rozpustné sacharidy budú úplné. Mikrobiologický rozbor odhalí veľké množstvo mikroorganizmov vrátane nebezpečných termofilných aktinomycét.

Vedou a praxou sa zistilo, že nutričná hodnota obilia od zberu až po sušenie sa môže iba v dôsledku prebiehajúcich enzymatických procesov znížiť o 20 % alebo viac. K výraznejším stratám na nutričnej hodnote obilia dochádza pri ich zbere v daždivom počasí.

Surové a vlhké zrno sa na 2. – 3. deň začne samovoľne zahrievať a potom klíčiť, plesnivieť a kaziť sa. Takže pri dennej teplote 25 ° C a v noci 16 ° C môže čerstvé zrno obsahovať 800 plesnivých húb, po 2 dňoch (v sile) - 15 000, v zrne priľnutom na stenách veže - 7 500 000.

Podmienená alebo, ako sa niekedy nazýva, kritická vlhkosť obilia skladovaného na dlhodobé skladovanie sa považuje za 10 – 15 %. Pri vyššej vlhkosti sa zrno rýchlo kazí. Jedným z hlavných dôvodov samoohrievania zrna je rozvoj plesní a baktérií. Ak klíčenie zrna začína absorpciou 40% vlhkosti do jeho hmoty, potom sa vývoj baktérií vyskytuje pri 16% a rozmnožovanie plesní nastáva pri 15% vlhkosti.

Náročnosť skladovania kŕmnych a obilných surovín spočíva v tom, že nie je možné ich očistiť od mikroorganizmov a baktérií. Mikroorganizmy a baktérie sú v prírode široko rozšírené a sú vždy prítomné v krmivách a surovinách. Nepriaznivé podmienky skladovania krmív podporujú vývoj a rast mikroorganizmov, pričom výrazne zhoršujú nutričné vlastnosti a niekedy sú úplne nevhodné na výživu. Jednou z hlavných príčin zlej kvality krmív a surovín je ich poškodzovanie plesňami, z ktorých mnohé produkujú druhotné produkty svojej životnej činnosti – mykotoxíny.

Termín "vlhké zrno" sa všeobecne používa pre zrno s obsahom vlhkosti medzi 18 a 20 %. Vlhké zrno sa začne zahrievať v priebehu niekoľkých hodín po zbere, a to najmä vplyvom mikroorganizmov. Ak sú podmienky skladovania nevhodné a nekontrolované, teplota zrna stúpne na úroveň, pri ktorej môžu úspešne rásť veľmi nebezpečné aktinomycéty, ktoré spôsobujú množstvo rôznych chorôb u zvierat a ľudí. Ak zrno obsahuje viac ako 18 % vody, dochádza k sekundárnym zmenám, ktoré spôsobujú kvasinky patriace do rodov Candida a Hansenula. Tieto mikroorganizmy sú schopné rásť pri veľmi nízkych hladinách kyslíka a za týchto podmienok môže dôjsť k slabému alkoholovému kvaseniu. Tento druh fermentácie vedie k zníženiu obsahu sacharózy a zvýšeniu obsahu redukujúcich cukrov v zrne, tvorbe rôznych chutí a poškodeniu lepku.

2.3. Mikrobiologické procesy prebiehajúce pri dozrievaní senáže Všeobecne sa uznáva, že hlavné spoločenstvo mikroorganizmov, ktoré sa zisťuje pri dozrievaní senáže, predstavujú podobne ako pri siláži tri hlavné fyziologické skupiny (kyselina mliečna, hnilobné baktérie a kvasinky), ale v menšie množstvo. Maximálny počet mikroorganizmov v sušenom materiáli sa zisťuje do 15 dní (v sile - do 7). Senáž má menej organických kyselín, viac cukru a jej kyslosť je zvyčajne nižšia ako siláž.

Biologickým základom výroby senáže je obmedzenie zvyškového dýchania rastlinných buniek a nežiaducich mikroorganizmov „fyziologickým suchom“. Sila zadržiavania vody v senáži je približne 50 atm. a osmotický tlak u väčšiny baktérií je 50–52 atm., t.j. pri vlhkosti trávy 40–55 % je voda vo forme, ktorá je pre väčšinu neprístupná. baktérie. V dôsledku zvýšeného osmotického tlaku v senážovej hmote nemôžu baktérie kyseliny maslovej a ich spóry využiť vlhkosť krmiva na svoj vývoj a klíčenie. Plesne môžu rásť pri stanovenej vlhkosti, ale ich existencia je náročná pre nedostatok vzduchu (kyslíka).

Osmotolerantné druhy baktérií mliečneho kvasenia môžu v tejto vlhkosti prosperovať. V kultúrach baktérií mliečneho kvasenia v senáži je vyššia osmotická aktivita, reprodukčná aktivita, akumulácia kyseliny mliečnej, ako aj schopnosť fermentovať komplexné sacharidy (škrob a pod.) ako v kultúrach baktérií mliečneho kvasenia v siláži.

Preto, podobne ako pri silážovaní, musia byť vytvorené optimálne podmienky pre rozvoj baktérií mliečneho kvasenia (priebežné zhutňovanie pri ukladaní a hermetické zakrytie polyetylénovou fóliou na obmedzenie prístupu vzduchu). Ak sklad nie je dostatočne zhutnený a netesný, dochádza k zahrievaniu, plesneniu krmiva a iným nežiaducim aeróbnym procesom.

V takýchto podmienkach sa nedá pripraviť kvalitná senáž.

V dôsledku samoohrievacích procesov sa prudko znižuje stráviteľnosť živín, najmä bielkovín. Technológia zberu senáže a siláže z tráv s nízkou vlhkosťou je podrobne popísaná v mnohých knihách a príručkách, tu len zdôrazníme, že pri dodržaní základných technologických metód je nutričná hodnota senáže vyššia ako nutričná hodnota pripravenej siláže. z prírodného krmiva alebo krmiva s nízkou vlhkosťou. 1 kg prírodného krmiva obsahuje 0,30–0,35 krmiva. Jednotky

2.4. Mikrobiologické procesy prebiehajúce počas silážovania

Kvantitatívne a kvalitatívne (druhové) zloženie spoločenstva mikroorganizmov, ktoré sa podieľajú na dozrievaní siláže, závisí aj od botanického zloženia zelenej hmoty, obsahu rozpustných uhľohydrátov a bielkovín v nej a vlhkosti pôvodnej hmoty. .

Takže napríklad suroviny bohaté na bielkoviny (ďatelina, lucerna, sladká ďatelina, vičenec a pod.) sú na rozdiel od surovín bohatých na sacharidy (kukurica, proso a pod.) silážované s dlhodobou účasťou na procesy hnilobných baktérií a s pomalým nárastom počtu baktérií mliečneho kvasenia.

V každom prípade sa však po položení rastlinnej hmoty v sklade pozoruje masová reprodukcia mikroorganizmov. Ich celkový počet po 2–9 dňoch môže výrazne prevýšiť počet mikroorganizmov, ktoré vstupujú s rastlinnou hmotou (tabuľka 7).

– – –

Pri všetkých metódach silážovania sa na dozrievaní sila podieľa spoločenstvo mikroorganizmov, ktoré tvoria dve diametrálne odlišné skupiny podľa charakteru vplyvu na rastlinný materiál: škodlivé (nežiaduce) a užitočné (žiaduce) skupiny. Povaha ich vzťahu sa líši nielen od symbiotickej po antagonistickú, čo v konečnom dôsledku určuje úspech alebo neúspech vo výsledku silážovania, ale aj od povahy silážovaného materiálu, vzduchu a teplotných režimov.

V procese silážovania sú teda hnilobné mikroorganizmy nahradené mliečnymi, ktoré tvorbou kyseliny mliečnej a čiastočne octovej znižujú pH krmiva na 4,0 – 4,2 a tým vytvárajú nepriaznivé podmienky pre vznik hnilobných mikroorganizmami (pozri tabuľku 7).

Podmienky existencie (potreba kyslíka, vzťah k teplote, aktívna kyslosť atď.) nie sú pre rôzne skupiny mikroorganizmov rovnaké.

Z hľadiska potreby kyslíka sa podmienečne rozlišujú tri skupiny mikroorganizmov:

Chov len v úplnej neprítomnosti kyslíka (povinné anaeróby);

Chov len v prítomnosti kyslíka (povinné aeróby);

Rozmnožuje sa v prítomnosti kyslíka aj bez neho (voliteľné anaeróby).

Väčšina mikroorganizmov, ktoré spôsobujú malfermentáciu, nemôže tolerovať pH pod 4,0, preto je žiaduce rýchlo dosiahnuť túto optimálnu úroveň kyslosti.

Na obmedzenie aktivity škodlivých mikroorganizmov a stimuláciu rozmnožovania prospešných baktérií je potrebné poznať vlastnosti jednotlivých skupín mikroorganizmov.

V tabuľke. Obrázok 8 schematicky znázorňuje fyziologické a biochemické charakteristiky hlavných predstaviteľov mikroorganizmov zapojených do silážnych procesov.

Tabuľka 8. Podmienky existencie mikroorganizmov v sile

– – –

Pre získanie vysoko kvalitnej siláže je nemenej dôležité vytvorenie anaeróbnych podmienok – tesné zhutnenie a dobré utesnenie.

V siláži získanej v nehermetických podmienkach (aeróbnych) počet baktérií mliečneho kvasenia po počiatočnom zvýšení rýchlo klesá, v hermetických (anaeróbnych) zostáva vysoký. Na 7. deň fermentácie v anaeróbnych podmienkach sa pozoruje vysoké percento homofermentačných baktérií, v aeróbnych podmienkach - pediokoky.

Hoci sa neskôr v tomto sile objaví dostatočné množstvo mliečnych tyčiniek, tie už nedokážu zabrániť rastu nežiaducich mikroorganizmov.

Baktérie mliečneho kvasenia sa teda vyznačujú nasledujúcimi vlastnosťami, ktoré sú dôležité pre silážovanie:

1) potreba metabolizmu, hlavne sacharidov (cukor, menej často škrob);

2) bielkovina sa nerozkladá (niektoré druhy v zanedbateľnom množstve);

3) sú fakultatívne anaeróby, to znamená, že sa vyvíjajú bez kyslíka a v prítomnosti kyslíka;

4) teplotné optimum je najčastejšie 30 °C (mezofilné baktérie mliečneho kvasenia), ale v niektorých formách dosahuje 60 °C (termofilné baktérie mliečneho kvasenia);

5) odolávať kyslosti až do pH 3,0;

6) môže sa rozmnožovať v siláži s veľmi vysokým obsahom sušiny;

7) ľahko tolerujú vysoké koncentrácie NaCl a sú odolné voči niektorým iným chemikáliám;

8) okrem kyseliny mliečnej, ktorá zohráva rozhodujúcu úlohu pri potláčaní nežiaducich typov fermentácie, vylučujú baktérie mliečneho kvasenia biologicky aktívne látky (vitamíny skupiny B a pod.). Majú preventívne (alebo liečebné) vlastnosti, stimulujú rast a vývoj hospodárskych zvierat.

Za priaznivých podmienok (dostatočný obsah vodorozpustných sacharidov vo východiskovom rastlinnom materiáli, anaerobióza) sa mliečna fermentácia končí už o niekoľko dní a pH dosahuje optimálnu hodnotu 4,0–4,2.

2.4.1. kukuričná siláž

Spôsoby zberu a skladovania kukuričnej siláže, ktoré sa v súčasnosti používajú vo výrobných podmienkach, neposkytujú vysokoenergetické krmivo. Často ani skoré dozrievajúce hybridy nestihnú v dôsledku klimatických podmienok, najmä v severnej časti Bieloruska, dosiahnuť optimálne štádiá vývoja (mliečny vosk, vosková zrelosť zrna). Vysoká vlhkosť počiatočnej zelenej hmoty a relatívne vysoký obsah cukru vedú, ako ukazuje prax, k výrobe prekyslených krmív (pH 3,3–3,7) s nízkou nutričnou hodnotou (0,12–0,14 kŕmnych jednotiek na 1 kg krmiva ).

Okrem toho existuje obava zo zhoršenia aeróbnej stability kvalitnej kukuričnej siláže (zrna).

V niektorých prípadoch sú pozorované výrazné straty pri vyskladnení kukuričnej siláže a jej skrmovaní aj napriek prísnemu dodržiavaniu základných technologických postupov pri znáške (zníženie vlhkosti, včasná znáška, spoľahlivé zhutnenie a prístrešok). K tomu dochádza v dôsledku aktivity aeróbnej mikroflóry, ktorá ako zdroj energie využíva najmä vo vode rozpustné sacharidy a kyselinu mliečnu. V praxi je to sprevádzané tepelným procesom, v konečnom dôsledku „aeróbnym rozmnožovaním“ siláže, ktorú zvieratá vyhodia.

2.4.2. Mikroflóra zelenej hmoty kukurice

Štúdie mikroflóry čerstvej zelenej hmoty kukurice a klasu pri zbere siláže ukázali, že jej zástupcovia zapojení do procesov dozrievania silážneho krmiva sa zisťujú približne v rovnakom číselnom pomere ako u iných druhov čerstvých surovín na siláž. Pri analýze kvantitatívneho a kvalitatívneho zloženia mikroflóry kukurice bol zistený prevažujúci počet hnilobných baktérií - Bacillus megaterium, Bacterium levans, Pseudomonas herbicola levans (tabuľka 9).

Zisťuje sa veľké množstvo kvasiniek - Hansenula anomala, Candida krusei, Pichia membranae faciens, Saecharomyces exiguus, ako aj plesňové huby Aspergillus fumigatus, Fusarium sporotriciella, Geotrichum candidum atď.

Hlavnými predstaviteľmi kukuričných mliečnych baktérií boli tyčinkovité formy typu Lactobacillus plantarum.

T a b l e 9. Počet mikroorganizmov v čerstvej zelenej hmote kukurice pri nakladaní do skladu, mil.

buniek/g silážnej hmoty

– – –

Mikroflóra čerstvo zozbieraných klasov je oveľa chudobnejšia ako mikroflóra zelenej hmoty odobratej v rovnakom čase a na tom istom poli. To naznačuje, že obal je ochranným krytom klasu vo vzťahu k mikroflóre. Takže 1 g obalu obsahuje jednotky a desiatky miliónov hnilobných baktérií, v samotnom klase sa našli hnilobné baktérie v desiatkach tisíc a baktérie mliečneho kvasenia stovky a tisíce buniek.

2.4.3. Mikroflóra silážovanej kukurice

Kukurica je bohatá na sacharidy, preto, keď sa pri silážovaní vytvoria anaeróbne podmienky, baktérie mliečneho kvasenia pomerne rýchlo získajú početnú prevahu nad hnilobnými. Ak bolo na 2. deň v kukuričnej siláži 430 miliónov baktérií mliečneho kvasenia, hnilobných baktérií - 425 miliónov na 1 g silážnej hmoty, tak po 15 dňoch, keď počet baktérií mliečneho kvasenia vzrástol na 900 miliónov, sa izolovali hnilobné baktérie v r. veľmi malé množstvá. Baktérie kyseliny maslovej sa nevyvíjajú pri optimálnych silážnych podmienkach.

Sledovanie dynamiky dozrievania kukuričnej siláže ukázalo, že v prvej fáze sa podieľajú nielen hnilobné a mliečne baktérie, ale aj kvasinky. Ich počet sa výrazne zvyšuje na 2. deň.

Aktivita kvasiniek v siláži sa považuje za nežiaducu z dvoch dôvodov.

Najprv súperia s baktériami mliečneho kvasenia o cukry, ktoré kvasia prevažne na etylalkohol, ktorý nemá výraznú konzervačnú hodnotu. Pri tvorbe etylalkoholu z glukózy najskôr vzniká pyruvát, ktorý sa potom dekarboxyluje na acetaldehyd, ktorý sa redukuje na etylalkohol. Okrem etylalkoholu tvoria kvasinky v anaeróbnych podmienkach aj ďalšie produkty (kyselina octová, propiónová, maslová, izomaslová, n-propanol, izobutanol, izopentanol). Niektoré kvasinky okrem hexózových cukrov využívajú pentózy (D-xylóza, D-ribóza), polysacharidy (škrob), alkoholy (manitol, sorbitol).

Po druhé, kvasinky sú hlavným pôvodcom aeróbneho rozkladu siláže pomocou organických kyselín (mliečna, octová, citrónová).

V kukurici bohatej na uhľohydráty pri optimálnom režime silážovania, v počiatočnom období dozrievania, je teda proces fermentácie spôsobený prevažne účasťou komunity mikroorganizmov fermentujúcich uhľohydráty: hnilobných, kyseliny mliečnej a kvasiniek. Hnilobné baktérie neprevládajú dlhšie ako prvých 2–5 dní a potom pod vplyvom zvyšujúceho sa počtu baktérií mliečneho kvasenia zastavia svoj vývoj v podmienkach nízkeho pH.

Baktérie mliečneho kvasenia, ktoré dosiahli dominantné postavenie, takmer úplne nahrádzajú hnilobné baktérie. Potom, ako hladina pH ďalej klesá, ich počet klesá.

Aeróbne podmienky v sile sú nepriaznivé pre rast plesní. Spravidla sa vyvíjajú iba v oddelených oblastiach, na okrajoch a na povrchoch, ktoré prichádzajú do styku so vzduchom.

Pri porušení technologického režimu silážovania v kukuričnej hmote je najviac ovplyvnená činnosť kvasiniek a maslových baktérií, teda mikroorganizmov, ktoré ničia sacharidy. Takáto siláž sa vyznačuje vysokým obsahom kyseliny octovej a dokonca aj maslovej. Prítomnosť veľkého množstva kyseliny octovej vždy poukazuje na zníženú kvalitu siláže.

2.4.4. Mikroflóra mrazom mrazenej kukurice V podmienkach severných oblastí Bieloruskej republiky sa vyskytujú prípady silážovania mrazenej kukurice. Pri správnej technológii silážovania mrazenej kukurice získavajú po 3-5 dňoch dominantné postavenie baktérie mliečneho kvasenia, ktorých počet je takmer 10-krát vyšší ako počet hnilobných baktérií a kvasinky na tomto materiáli sú detekované ešte vo väčšom počte ako v r. vyzreté silá z kukurice nepoškodené mrazom.

Na tomto materiáli hlavné ekologické spoločenstvo mikroorganizmov predstavuje kyselina mliečna a hnilobné baktérie, ako aj kvasinky. Z hnilobných baktérií boli izolované tie isté druhy, ktoré sa bežne vyskytujú pri silážovaní zelenej hmoty rôznych rastlín vrátane kukurice – Pseudomonas herbicola a Bacterium levans.

Biochemické údaje naznačujú, že procesy dozrievania týchto síl sú charakterizované rýchlou a veľmi vysokou akumuláciou organických kyselín. Zároveň sa zistilo, že počas skladovania sa kyslosť v týchto silách výrazne znižuje. Dá sa to vysvetliť spotrebou kyselín kvasinkami, keďže tieto sa tu nachádzajú aj v 9-mesačnej siláži, čo vedie k nižšej kvalite hotového krmiva.

Po 5 mesiacoch skladovania bola kvalita siláže odobratej v strede skladu a v hlbších vrstvách dobrá z hľadiska zloženia organických kyselín, mikroflóry a organoleptických ukazovateľov, pričom v hornej časti bola získaná nekvalitná siláž. štruktúru. Silo z hornej vrstvy skladu ostro zapáchalo po kyseline maslovej a v dominantnom množstve nad mliečnymi sa v ňom nachádzali hnilobné baktérie: 30, resp. 23 miliónov baktérií na 1 g silážnej hmoty. Tu boli baktérie kyseliny maslovej nájdené v oveľa väčšom počte v porovnaní so silom ležiacim v strede konštrukcie.

Mikrobiologické procesy dozrievania siláže z mrazom poškodenej kukurice tak prebiehajú intenzívnejšie ako pri silážovaní ňou nepoškodenej kukurice; s väčšou účasťou nežiaducej mikroflóry vo vrchných vrstvách. Oneskorenie pri zbere mrazenej kukurice je neprijateľné, pretože to prispieva rýchly rozvoj na mrazených rastlinách nežiaducej mikroflóry a výrazne znižuje kvalitu hotovej siláže.

Mrazom poškodenú kukuricu je preto potrebné zberať rýchlo a ihneď silážovať pri dodržaní všetkých technologických postupov.

2.4.5. Vplyv kukuričnej siláže na metabolizmus v organizme zvieraťa Denne sa do tela zvieraťa privedie silážou 0,7–0,9 kg organických kyselín, ktoré majú významný vplyv na trávenie a metabolizmus. Ale ak je siláž okyslená, potom sa množstvo kyselín výrazne zvyšuje. Takáto siláž má negatívny vplyv nielen na metabolické procesy, ale aj na chuťové a technologické vlastnosti mlieka, ako aj na jeho spracované produkty (syry, maslo).

Dlhodobé skrmovanie kukuričnej siláže spontánnej fermentácie v čistej forme (bez iných krmív) brzdí fermentačné procesy v bachore prežúvavcov, brzdí rozvoj mikroflóry a spôsobuje zníženie stráviteľnosti živín v potrave, ako aj priemerných denných prírastkov v živej hmotnosti. Zvieratá odmietajú krmivo z kukurice, v ktorej prebehli sekundárne fermentačné procesy.

Zistilo sa zníženie alkalickej rezervy a krvného cukru u kráv, ktoré hojne jedli siláž spontánnou fermentáciou.

Podávanie 20–25 kg kukuričnej siláže s obsahom kyseliny maslovej dojniciam spôsobilo ťažkú formu acidózy a výrazne zvýšilo kyslosť mlieka.

Silový typ kŕmenia kráv s nedostatkom ľahko stráviteľných sacharidov v potrave znižuje amylolytickú aktivitu obsahu bachora a tráviaceho traktu slepého čreva. Dlhodobé skrmovanie kráv 25-30 kg denne peroxidovou kukuričnou silážou spontánnej fermentácie negatívne ovplyvňuje reprodukčnú schopnosť kráv, biologickú využiteľnosť mledziva a mlieka, čo vedie k zníženiu rastu teliat a ich odolnosti voči gastrointestinálne ochorenia. Vedecké závery sa potvrdili v praktických podmienkach kŕmenia kráv kukuričnou silážou.

Treba si uvedomiť, že ketonémia v tele vysokoprodukčných kráv sa vyvíja rýchlejšie ako u nízkoprodukčných kráv. Porušenie pomeru metabolitov uhľohydrátov a tukov v tele vedie k tomu, že sa v krvi a tkanivách objaví značné množstvo nedostatočne oxidovaných metabolických produktov vo forme ketónových (acetónových) teliesok a rozvoj ketózy.

Fenomény ketózy v tele sú zvyčajne spojené s porušením metabolizmu sacharidov a tukov so súčasným znížením množstva cukru v krvi a prudkým zvýšením ketolátok. Hlavnou príčinou ketózy je príjem kyslých produktov látkovej premeny do organizmu v období neobvyklých podmienok pre vstrebávanie živín z potravy, t.j. gravidita, laktácia, stres a pod. Z toho vyplýva najväčšia predispozícia ku ketóze u samíc hospodárskych zvierat konzumujúcich zvýšené množstvo siláže.

Ketonémia, bez ohľadu na príčinu, ktorá ju spôsobila, je charakterizovaná akumuláciou ketolátok v krvi a tkanivách pod vplyvom aktivovanej kyseliny octovej a acetoctovej. Kyselina acetoctová sa enzýmom dehydrogenázou premieňa na kyselinu hydroxymaslovú a táto reakcia je reverzibilná. V bachore prežúvavcov bola zistená acetoacetátdekarboxyláza, ktorá umožňuje tkanivám bachora využívať kyselinu acetoctovú s uvoľňovaním acetónu a oxidu uhličitého. Tieto metabolity sa z tela vylučujú močom a vydychovaným vzduchom.

Ak napríklad charakteristický zápach acetónu pociťujú so vzduchom vydychovaným prežúvavcami, je to indikátor ketózy.

Prekurzory ketolátok zahŕňajú tyrozín, leucín, izoleucín a fenylalanín, syntetizované v bachore a dodávané s potravou. Za deň sa v tele kravy môže vytvoriť až 300 g ketolátok. Hlavným zdrojom tvorby ketózy v tele je kyselina maslová. Jeho odstránením z tela sa zastaví ketonémia. Za miesto tvorby ketolátok sa považujú tkanivá jazvy, pečene a niekedy aj mliečnej žľazy. Ketolátky sú využívané takmer všetkými tkanivami tela.

Hlavnou podmienkou konečného rozkladu ketolátok na oxid uhličitý a vodu v organizme je prítomnosť dostatočného množstva glukózy v tkanivách a krvi. Maximálne využitie ketolátok telesnými tkanivami je možné pri koncentrácii v krvi 20 mg %, prekročenie tohto limitu vedie ku ketonémii. Vylučovanie ketolátok z tela močom, mliekom a vydychovaným vzduchom je sprevádzané uvoľňovaním rovnakého množstva iónov sodíka a draslíka, čo spôsobuje zníženie alkalickej rezervy krvi.

Na prevenciu ketonémie u prežúvavcov sa zvyčajne odporúčajú hormonálne prípravky ako inzulín, ACTH, tyroxín, ale aj glycerol, glukóza, kyselina propiónová a jej soli. Ich zavedenie do tela sa považuje za nevyhnutné na zvýšenie kyseliny propiónovej v bachore a zníženie kyseliny maslovej. To je tiež uľahčené vyvážením stravy na bielkoviny a sacharidy, kŕmením zvierat škrobovými a sladkými krmivami.

Skrmovanie siláže kravám zákvasom s kyselinou propiónovou aktivuje aktivitu celulolytických baktérií v tráviacom trakte, čím sa zvyšuje rozklad vlákniny, stimuluje sa rozvoj baktérií kyseliny propiónovej v bachore a zlepšuje sa obsah živín v potrave absorbované. Koeficient stráviteľnosti hlavných zložiek potravy pri takejto siláži je teda vyšší ako pri siláži zo spontánnej fermentácie: pre bielkoviny - o 4 %, pre tuk - o 8,4 %, pre vlákninu - o 2,1 % a bezdusíkaté extraktívne látky – o 3 %. Silážovanie zákvasom u dojčiacich kráv spôsobuje zvýšenie koncentrácie cukru o 10-15%, rezervnú zásaditosť - o 20-40 mg%, znižuje koncentráciu ketolátok o 5-7 mg% a tým predchádza acidóze. U gravidných suchých kráv sa aktivuje trávenie a zlepšuje sa fyziologický stav. Svedčí o tom zvýšenie alkalickej rezervy v krvi v priemere o 10 mg%, koncentrácia cukru o 20 mg%, pokles hladiny ketolátok v nej o 4,6 mg% a narodenie zdravých, životaschopných teliat. . U kráv v laktácii sa obsah tuku v mlieku zvyšuje o 0,20-0,25%, obsah bielkovín - o 0,20-0,30% a laktózy - o 0,10-0,20%.

Použitie uhoľných amónnych solí (UAS) v množstve 10 kg/t krmiva dáva pozitívne výsledky pri dezoxidácii kukuričnej siláže. Siláž je navyše zároveň obohatená o bielkoviny.

2.4.6. Aeróbny rozklad kukuričnej siláže

Dobrá a najkvalitnejšia siláž je niekedy vystavená rýchlemu ohrevu pri vyskladnení alebo pri vstupe vzduchu do skladu.

V kukuričnej siláži dosiahli aeróbne straty v niektorých prípadoch 32 % v priebehu 15 dní.

V silách, v ktorých dochádza k aeróbnemu kazeniu, sa zóna zvýšenej teploty najskôr rozprestrie na povrchu sila v sklade (rameno) a časom sa prehĺbi o 20–40 cm, následne sa povrchová vrstva (0–15 cm) ochladí, a jeho pH sa zvýšilo na 8,5–10,0 a začal sa rozvoj plesňových húb. V prvom štádiu kazenia teda dochádza k zahrievaniu a zvýšeniu pH a v druhom štádiu kazenia k plesneniu. Výsledkom týchto negatívnych javov je ničenie kyseliny mliečnej, sacharidov a iných cenných látok s tvorbou mykotoxínov nebezpečných pre zdravie zvierat.

2.4.7. Príčiny aeróbneho trávenia potravy

Pod "sekundárnou" fermentáciou sa rozumie oxidácia organických kyselín (hlavne kyseliny mliečnej) vznikajúcich pri silážovaní za prístupu vzduchu po ukončení fermentácie. Tento výraz, ktorý sa v posledných rokoch často používa, nie je vo vedeckom zmysle úplne presný. Ak je fermentácia proces anaeróbneho trávenia sacharidov, potom „sekundárna“ fermentácia je opačný proces enzymatického rozkladu s prístupom kyslíka.

Prenikanie vzduchu vedie k rýchlemu rozkladu sacharidov, kyseliny mliečnej a ďalej k rozkladu bielkovín so zvýšením pH. V praxi je to sprevádzané tepelným procesom, nepríjemným zápachom, porušením štruktúry krmiva (rozmazané, zničené). Aj pri slabom samoohrievaní až na teplotu 40 °C zvieratá takéto krmivo odmietajú.

Pomalé plnenie, oneskorené tesnenie sú všetky postupy, ktoré zvyšujú populáciu aeróbnych mikroorganizmov, ktoré sa začnú aktívne rozvíjať hneď po otvorení sila.

2.4.8. Mikroflóra aeróbneho rozkladu krmiva

Zistilo sa, že primárnymi pôvodcami sekundárnej fermentácie sú kvasinky, ktoré majú schopnosť asimilovať (rozkladať) kyselinu mliečnu.

Prítomnosť kvasiniek v siláži bola prvýkrát zistená v roku 1932, ale ich význam bol podceňovaný až do roku 1964, kedy sa ukázalo, že kvasinky zohrávajú hlavnú úlohu pri rozklade siláže pri vystavení vzduchu. Nezáujem o tieto mikroorganizmy sa vysvetľoval tým, že ich počet v siláži je zanedbateľný. Kukuričná siláž sa však často vyznačuje vysokým počtom týchto mikroorganizmov, najmä ak je aeróbna fáza v sile dlhá.

Hlavné kvasinky nachádzajúce sa v siláži sú rozdelené do dvoch skupín:

1) spodné kvasenie alebo sedimentárne kvasinky, ktoré prednostne fermentujú cukry (Torulopsis sp.);

2) kvasnice vrchného kvasenia alebo membránové, ktoré majú slabú schopnosť kvasiť, ale efektívne využívajú kyselinu mliečnu ako substrát (Candida sp., Hansnula sp.).

Štúdium dynamiky fermentácie ukázalo, že obsah kvasiniek v samoohrevnej kukuričnej siláži bol spočiatku 105–107 kvasiniek na 1 g ihneď po zbere a potom postupne klesal. Väčšina kmeňov kvasiniek izolovaných z takýchto síl patrí Candida sp., Hansnula sp. Najčastejšie patogény nestability ako Candida krusei, Candida lamlica, Pichia strasburgensia, Hansenula anomala sú odolné voči veľmi nízkym hodnotám pH.

Nestabilná kukuričná siláž má po 5 dňoch aeróbneho skladovania astronomicky vysoký počet nielen kvasiniek, ale aj iných mikroorganizmov (tabuľka 10).

– – –

Zvlášť nápadná je prítomnosť v siláži obyvateľov neutrálnych alebo mierne zásaditých pôd - streptomycét. Ich prítomnosť, ale aj „pravé“ silážne plesne sú jednou z príčin nevhodnosti na skrmovanie takouto silážou. Ale v prítomnosti „skutočných“ plesňových húb a streptomycét cudzích siláži nehovoríme o primárnych patogénoch sekundárnej fermentácie, ale už o sekundárnej flóre s aeróbnou nestabilitou.

Na konci spontánnej fermentácie kukuričnej siláže je množstvo kvasiniek minimálne 104 buniek na 1 g krmiva (tab. 11).

Tabuľka 11. Kukuričná siláž (konečný odhad po 173 dňoch)

– – –

plesňové huby, podobne ako kvasinky, zohrávajú negatívnu úlohu pri rozklade síl s prístupom vzduchu, pretože tvoria toxické látky - mykotoxíny. V skúmaných vzorkách odobratých zo síl pred kŕmením boli izolované a identifikované tieto plesne: Aspergillus sp., Fusarium sp., Penicillium sp.

Zvieratá ošetrené plesnivou kukuričnou silážou obsahujúcou A. fumigatus vykazovali zápal tenkého čreva, zmeny v stredných tkanivách pľúc, stratu chuti do jedla a hnačku.

Porušenie srdcovej činnosti (pulz je rýchly, arytmický) a dýchania, poruchy trávenia (atónia bachora alebo zvýšená črevná motilita), depresia, odmietanie potravy spôsobujú mykotoxíny Fusarium sporotrichiella, Geotrichum candidum. Tieto mykotoxíny dodávajú siláži zatuchnutý zápach a spôsobujú plesňové infekcie u hospodárskych zvierat.

2.4.9. Spôsoby zvýšenia aeróbnej stability siláže

Správne otvorenie sila, mikrobiologický rozbor zelenej hmoty umiestnenej v sile, použitie chemických konzervačných prostriedkov s fungicídnymi (fungistatickými) vlastnosťami sú hlavnými opatreniami na obmedzenie mikrobiologického znehodnotenia pri dlhodobom skrmovaní alebo aeróbnom skladovaní kukuričnej siláže (mokré zrno) .

Najzrejmejšie a efektívnym spôsobom Na zabránenie aeróbnemu rozkladu sa siláž podáva zvieratám v deň, keď sa vyberie zo sila. Časté odoberanie krmiva tiež zvyšuje rozklad na odkrytom povrchu sila. Vykladanie by sa malo vykonávať bez pohybu vrstiev, čím sa naruší pevnosť sila, ktoré zostáva v sile.

Jedným z možných opatrení na zlepšenie aeróbnej stability kukuričnej siláže je ošetrenie zelenej hmoty chemikáliami, ktoré potláčajú aeróbna mikroflóra prísny.

V tabuľke. 12 sú uvedené najčastejšie používané konzervačné látky, ktoré majú fungistatický (fungicídny) účinok na patogény sekundárnej fermentácie.

– – –

Mravčan vápenatý a kyselina octová nemajú praktický inhibičný účinok na kvasinky, ak je aplikovaná koncentrácia nižšia ako 0,5 %. Napriek rýchlemu odbúravaniu dusitanu sodného, hexametyléntetramínu, sa odporúčajú obmedziť procesy druhotného kvasenia, keďže do začiatku kvasenia „oslobodzujú“ siláž od kvasiniek. Najúčinnejšími fungistatickými (fungicídnymi) konzervačnými prostriedkami v procesoch sekundárnej fermentácie sú kyseliny propiónová a octová, benzoan sodný, pretože sa pri vyskladnení siláže z veľkej časti zakonzervujú.

Porovnávacia štúdia fungistatických (fungicídnych) vlastností kyseliny propiónovej, mravčej, benzoovej, benzoátu sodného, dusitanu sodného, konzervačných látok (ktoré zahŕňajú kyselinu propiónovú a močovinu), fínskych konzervačných látok (typ Viher) ukázala, že dusitan sodný a kyselina benzoová mali najvyššia aktivita.kyselina, ktorá inhibovala rast kvasiniek až o 98%. Sila účinku chemických konzervantov závisela od ich dávky, koncentrácie vodíkových iónov a počtu kvasinkových buniek.

K zvýšeniu bezpečnosti siláže pri vyberaní zo sila a kŕmení zvierat prispieva aj používanie prípravkov vytvorených na báze kombinovaných homofermentačných a heterofermentačných kmeňov baktérií mliečneho kvasenia. Hoci začlenenie heterofermentačných baktérií vedie k určitému zvýšeniu strát živín pri silážovaní, prispieva to k zvýšeniu kyseliny octovej v krmive, a teda k zvýšeniu jeho aeróbnej stability.

Technológia zberu kukuričnej siláže používaná vo výrobných podmienkach teda neposkytuje vždy vysoko výživné krmivo. Siláž je okyslená a jej konzumácia zvieratami je nízka. Z toho vyplýva nízka efektívnosť využívania energetických zdrojov. Výdatné kŕmenie zvierat peroxidovanou silážou vedie k porušeniu hladiny cukru, alkalickej rezerve v krvi, k rozvoju ketózy atď.

V praxi sú známe prípady, kedy sa kvalitná kukuričná siláž pri vyskladnení alebo v samotnom sklade pri dostupnosti vzduchu rýchlo „zohreje“ a veľmi rýchlo splesnivie. Príčinou aeróbnej nestability je prítomnosť kvasiniek (Candida sp., Hansenula sp.), ktoré dokážu asimilovať kyselinu mliečnu.

Použitie tohto vedie k tomu, že kyslé prostredie je nahradené alkalickým prostredím (pH 8,5–10,0), vytvárajú sa priaznivé podmienky pre rozvoj plesňovej, maslovej, hnilobnej mikroflóry.

V prípade, že 1 g počiatočnej silážovanej hmoty obsahuje viac ako 4 105 húb, nie je možné z nej získať aeróbne stabilnú siláž a sú potrebné dodatočné opatrenia na obmedzenie strát.

Na potlačenie patogénov sekundárnej fermentácie existujú prípravky s fungicídnou (fungistatickou) aktivitou. Najlepšiu aktivitu proti kvasinkám vykazovala kyselina benzoová, dusitan sodný, ktorý takmer úplne (98 %) kvasinky inhiboval.

Na zlepšenie aeróbnej stability kukuričnej siláže sa navrhujú komplexné biologické prípravky na báze homo- a heterofermentačných baktérií mliečneho kvasenia.

2.5. Vplyv hlavných environmentálnych faktorov na životnú aktivitu baktérií mliečneho kvasenia 2.5.1. Vplyv chemického zloženia pôvodnej rastlinnej zelenej hmoty na enzymatickú aktivitu baktérií mliečneho kvasenia Intenzita tvorby kyseliny mliečnej tvorenej baktériami mliečneho kvasenia závisí od kvantitatívneho pomeru mikroorganizmov a od chemického zloženia rastlinnej hmoty.

Vo väčšine prípadov prirodzená prítomnosť baktérií mliečneho kvasenia nestačí na dosiahnutie rýchleho zvýšenia kyslosti silážovanej hmoty. Výnimkou je kukurica a iné suroviny bohaté na voľné cukry. Znakom fermentácie pri silážovaní takejto zelenej hmoty je, že už na 2. – 3. deň je početná prevaha baktérií mliečneho kvasenia, ktoré na 12. deň tvoria celú masu baktérií v siláži. Je to spôsobené zásobovaním týchto kultúr mono- a disacharidmi, ktoré sú najvhodnejšie pre výživu a existenciu baktérií mliečneho kvasenia. Pri dodržaní všetkých technologických metód, v dôsledku rýchlych biochemických premien počas počiatočného skladovania, kukuričná siláž (v čistej forme aj s prídavkom slamy) plne dozrieva 15. deň od okamihu znášky.

Mnohé monosacharidy (glukóza, levulóza, galaktóza, manóza) sú fermentované spravidla všetkými baktériami mliečneho kvasenia.

Všeobecná rovnica fermentácie kyseliny mliečnej C6H12O6 = 2CH3CHOH · COOH glukóza kyselina mliečna je súhrnná rovnica, ktorá zhŕňa množstvo zložitých premien sacharidov a produktov ich rozpadu, ktoré v mikrobiálnej bunke prebiehajú na etapy.

Niektoré druhy baktérií mliečneho kvasenia majú schopnosť využívať pentózy (xylóza, arabinóza) a najmä ramnóza (metylpentóza).

Disacharidy (sacharóza, maltóza, laktóza) sa zvyčajne asimilujú selektívne. Niektoré druhy baktérií mliečneho kvasenia niektoré sacharidy fermentujú, iné nie. V prírode však existujú baktérie mliečneho kvasenia, ktoré dokážu absorbovať a fermentovať pomerne široké spektrum disacharidov.

Polysacharidy (dextríny, škrob, inulín) môžu fermentovať iba jednotlivé, nedávno opísané formy baktérií mliečneho kvasenia. Rastlinná hmota obsahuje levulesanové polysacharidy, ktoré plnia úlohu rezervných látok. Pomerne ľahko sa hydrolyzujú a podľa dostupných predbežných údajov sa zdá, že sú fermentované niektorými baktériami mliečneho kvasenia.

Vlákninu nevyužívajú baktérie mliečneho kvasenia. Jeho zásoba v silážovanej hmote zostáva nezmenená.

Zloženie finálnych produktov fermentácie sa dosť výrazne mení, ak sa nefermentuje hexóza, ale pentóza, teda cukor s piatimi atómami uhlíka: vznikajú produkty fermentácie s dvoma a tromi atómami uhlíka (kyselina mliečna a octová).

V tomto prípade môže byť proces fermentácie vyjadrený nasledujúcou približnou rovnicou:

6С5Н10О5 = 8С3Н6О3 + 3С2Н4О2.

pentóza kyselina mliečna octová Rastlinné suroviny obsahujú pentózany, ktoré hydrolýzou poskytujú pentózy. Preto sa nemožno čudovať, že aj pri bežnom zrení siláže sa v nej zvyčajne nahromadí nejaké množstvo kyseliny octovej.

Podľa zloženia fermentačných produktov sa baktérie mliečneho kvasenia v súčasnosti delia do dvoch hlavných skupín:

1) homofermentatívna - tvoriaca z cukrov, okrem kyseliny mliečnej, len stopy vedľajších produktov;

2) heterofermentatívna - tvoriaca z cukrov okrem kyseliny mliečnej značné množstvo oxidu uhličitého a iných produktov.

Známe biochemické charakteristiky vyššie uvedených skupín baktérií mliečneho kvasenia sú uvedené v tabuľke. 13, ktorý označuje hromadiace sa hlavné produkty ich životnej činnosti.

Tabuľka 13. Produkty fermentácie baktérií mliečneho kvasenia vytvorené zo sacharidov

– – –

Ako je zrejmé z tabuľky, homofermentatívne baktérie mliečneho kvasenia na rozdiel od heterofermentačných tvoria veľmi malé množstvá prchavých kyselín (kyseliny octovej), alkoholu a oxidu uhličitého.

Strata energie počas fermentácie glukózy homofermentatívnymi baktériami mliečneho kvasenia je 2–3 % a výťažok kyseliny mliečnej je 95–97 %.

Intenzitu tvorby kyseliny mliečnej tvorenej baktériami mliečneho kvasenia môže výrazne ovplyvniť nielen zloženie média (chemické zloženie rastlinnej hmoty uloženej na siláž, senáž), ale aj ďalšie podmienky (kyslosť média, teplota, prevzdušňovanie atď.).

2.5.2. Vplyv strednej kyslosti na rýchlosť akumulácie kyseliny

o rôzne významy Medzireakcie pH, ktoré prebiehajú počas fermentácie, majú iný smer. Ak sa výsledná kyselina mliečna zneutralizuje, potom s rozvojom homofermentatívnych baktérií mliečneho kvasenia sa na hexózach hromadí značné množstvo kyseliny octovej a iných vedľajších produktov (až 40% fermentovaného cukru).

Výsledky mnohých výskumníkov preukázali pokles kyseliny mliečnej v siláži so zvyšujúcim sa pH. V skupine vzoriek s pH nad 5,0 bol teda pozorovaný nízky obsah kyseliny mliečnej a jej pomer s kyselinou octovou bol 1:1.

Vzhľadom na to, že baktérie mliečneho kvasenia produkujú značné množstvo kyselín v dôsledku svojej životnej činnosti, vyvíjajú sa pri pomerne nízkej hodnote pH.

Skupina baktérií mliečneho kvasenia zahŕňa kokoidné aj tyčinkovité formy.

Tyčinkovité formy tolerujú nižšiu kyslosť.

Táto vlastnosť tyčiniek kyseliny mliečnej vysvetľuje skutočnosť, že sa hromadia ku koncu silážovania, keď je krmivo z veľkej časti okyslené.

Porovnanie materiálov rôznych výskumníkov ukazuje, že pre rovnaké formy baktérií mliečneho kvasenia sú uvedené neidentické hodnoty kritickej hodnoty pH. To nie je prekvapujúce, pretože poloha hlavných bodov pH je ovplyvnená zložením kyselín, ktoré určujú reakciu média, ako aj zložkami substrátu, v ktorom sa baktérie vyvíjajú. Preto napríklad minimálne body pH pre žiadnu baktériu nebudú rovnaké v dvoch rôznych prostrediach. Kyselina octová, menej disociovaná, ale škodlivejšia pre mikroorganizmy, zastavuje vývoj baktérií mliečneho kvasenia pri vyššom pH ako kyselina mliečna.

2.5.3. Vplyv teploty na energiu tvorby kyseliny mliečnych baktérií Životne dôležitá aktivita baktérií mliečneho kvasenia môže úspešne prebiehať tak v relatívne chladných, ako aj v samovyhrievacích silách.

Oddelené druhy a rasy baktérií mliečneho kvasenia sa môžu vyvíjať za celkom odlišných teplotných podmienok. Najbežnejší zástupcovia z nich žijú v rozmedzí od 7-10 do 10-42 ° C, pričom optimum je asi 25-30 ° C.

Na obr. Tabuľka 1 ukazuje indikátor životnej aktivity jednej z rás baktérií mliečneho kvasenia, ktoré sa pomerne často vyskytujú v silážovanom krmive, - energiu tvorby kyseliny pri rôznych teplotách.

Ryža. 1. Vplyv teploty na energiu tvorby kyseliny mliečnych baktérií V prírode sú však časté formy mliečnych baktérií, ktoré sa môžu množiť v pásme vyšších aj nižších teplôt.

Napríklad v silách zrejúcich v zime pri veľmi nízkej kladnej teplote sa nachádzajú streptokoky s minimálnym teplotným bodom pod 5 °C. Ich optimum je okolo 25°C a maximum je okolo 47°C. Pri teplote 5 °C tieto baktérie ešte dosť energicky akumulujú kyselinu mliečnu v krmive.

Pri nízkych teplotách sa môžu vyvinúť nielen kokoidné, ale aj tyčinkovité formy baktérií mliečneho kvasenia.

V samoohrevných silách bolo možné nájsť spolu s bacilom kyseliny mliečnej aj koky. Minimálny teplotný bod kokov schopných vyvíjať sa pri zvýšených teplotách je asi 12 ° C, tyčiniek - asi 27 ° C. Teplotné maximum týchto foriem sa blížilo k 55°C, pričom optimum leží v rozmedzí 40–43°C.

Baktérie mliečneho kvasenia sa v extrémnych podmienkach – pri teplotách nad 55 °C – zle vyvíjajú a pri ďalšom zvyšovaní teploty odumierajú ako formy, ktoré netvoria spóry. Charakter vplyvu rôznych teplôt na akumuláciu kyseliny mliečnej v siláži obilných tráv je znázornený na obr. 2.

Ryža. Obr. 2. Vplyv teploty na akumuláciu kyseliny v trávnej siláži Ako je možné vidieť, pri teplote 60 °C je akumulácia kyseliny mliečnej silne potlačená.

Niektorí výskumníci poznamenávajú, že kyselina mliečna sa hromadí v silách, keď sa zohrievajú aj nad teplotu 60–65 °C. V tejto súvislosti treba mať na pamäti, že ho môžu produkovať nielen baktérie mliečneho kvasenia.

Kyselinu mliečnu do určitej miery produkujú aj iné baktérie. Najmä vzniká v prostredí pri vývoji niektorých výtrusných tyčiniek patriacich do skupiny You. subtilis a chov pri zvýšených teplotách.

Takéto formy sú vždy bohato zastúpené v samovyhrievacích silách.

2.5.4. Vplyv prevzdušňovania na aktivitu baktérií mliečneho kvasenia

Baktérie mliečneho kvasenia sú podmienené fakultatívne anaeróby, to znamená, že môžu žiť v prítomnosti kyslíka aj v anaeróbnych podmienkach. Stupeň zásobenia prostredia kyslíkom možno charakterizovať hodnotou redoxného (OR) potenciálu (Eh). Niekedy je potenciál OB vyjadrený hodnotou rH2, vypočítanou podľa vzorca Eh (v milivoltoch) rH2 = + 2pH.

Hodnota rH2 ukazuje záporný logaritmus koncentrácie molekúl vodíka, vyjadrený v atmosfére. Je celkom zrejmé, že stupeň dodávky kyslíka priamo súvisí s koncentráciou molekúl vodíka v médiu, ktoré udávajú stupeň jeho redukcie.

V kyslíkovom prostredí s neutrálnou reakciou je hodnota Eh 810 a rН2 = 41. Vo vodíkovej atmosfére je Eh = –421 a rН2 = 0. Výkyvy uvedených hodnôt sú charakteristické pre jednu alebo druhú stupeň aerobicity. V prostredí, kde sa vyvíjajú baktérie mliečneho kvasenia, môže potenciál klesnúť pomerne nízko, na hodnotu rH2 5,0–6,0.

Baktérie mliečneho kvasenia teda nepotrebujú kyslík. Na získavanie potrebnej energie pomocou fermentačného procesu sú tak prispôsobené, že ani s prístupom vzduchu neprejdú na dýchanie a naďalej vyvolávajú kvasný proces.

Je to spôsobené nedostatkom systému enzýmov v baktériách mliečneho kvasenia, ktoré zabezpečujú dýchanie (hemín enzým, kataláza atď.).

Pravda, existujú samostatné fakty svedčiace o schopnosti niektorých patogénov procesu kyseliny mliečnej existovať v aeróbnych podmienkach v dôsledku dýchania.

Je možné, že sa podobné formy baktérií vyskytujú, ale predstavujú výnimku.

V literatúre sú údaje o oxidácii kyseliny mliečnej jednotlivými baktériami mliečneho kvasenia za aeróbnych podmienok. V dôsledku toho sa v kultúrach takýchto mikroorganizmov kyslosť časom znižuje. Úvahy tohto druhu sú sotva opodstatnené.

V husto zabalenom silážnom krmive sa môžu baktérie mliečneho kvasenia intenzívne množiť, zatiaľ čo veľká väčšina hnilobných baktérií a plesní zažíva jasnú depresiu.

Ak je k silážovanej hmote prístup kyslíka, potom je kyselina mliečna zničená kvasinkami, plesňami a inými aeróbnymi baktériami.

V tomto prípade klesá kyslosť siláže, začínajú sa v nej rozvíjať hnilobné procesy a dochádza k znehodnoteniu krmiva (obr. 3).

– – –

Na obr. 3 ukazuje, že aeróbne podmienky prispeli k rozkladu kyseliny mliečnej v siláži z kelu. Toto krmivo sa pokazilo, pretože konzervačný faktor – kyselina mliečna – už nemal vplyv na nežiaducu mikroflóru, ktorá zostávala v kŕmnej hmote v pasívnom stave.

2.5.5. Vplyv zvýšeného osmotického tlaku média na vývoj baktérií mliečneho kvasenia Informácie o odolnosti baktérií mliečneho kvasenia voči zvýšenému osmotickému tlaku média sú obmedzené. Z dostupných informácií vyplýva, že rôzne typy týchto mikroorganizmov majú rôzny postoj k prítomnosti chloridu sodného v životnom prostredí, niekedy aj adaptáciu na vysoké koncentrácie solí.

Podrobné štúdie fyziológie baktérií mliečneho kvasenia, realizované pod vedením E. N. Mishustin, presvedčivo ukázali slabú adaptabilitu epifytických baktérií mliečneho kvasenia na fermentáciu v médiu s vysokým osmotickým tlakom v rastlinných bunkách. Novšie štúdie zistili, že kultúry baktérií mliečneho kvasenia v senáži sú osmofilnejšie ako kultúry izolované zo siláže. Odolali koncentrácii chloridu sodného od 7 do 10%, zatiaľ čo silážne baktérie mliečneho kvasenia - až 7%. Súčasne, už pri 6% obsahu soli v médiu, sa morfológia buniek začína meniť: tvar sa predlžuje, na koncoch bunky sa pozoruje opuch, zakrivenie v strede a pozdĺž okraja a niektoré z ich životne dôležitých funkcie sú porušené. Je to kvôli dehydratácii a ťažkostiam s prijímaním živín bunkami z životné prostredie.

Približne v rovnakých podmienkach mikroorganizmy spadajú do procesu zberu senáže. Kultúry baktérií mliečneho kvasenia v senáži, ktoré sa prispôsobili vysokej osmotickej aktivite bunkovej šťavy (50 atm. pri 40–45% vlhkosti trávy), majú vyššiu schopnosť prežívania ako baktérie mliečneho kvasenia v siláži, hnilobné mikroorganizmy, kvasinky.

Osmotická aktivita kultúr baktérií mliečneho kvasenia v senáži je teda faktorom, ktorý zabezpečuje ich dominantné postavenie pri príprave a ďalšom skladovaní krmív s nízkou vlhkosťou. Ak je obsah vlhkosti v konzerve pod 50-60%, bude dobre zachovaná aj pri nedostatku vo vode rozpustných sacharidov.

Kultúry baktérií mliečneho kvasenia v senáži a siláži sa líšia nielen osmotickou aktivitou, ale aj aktivitou reprodukcie a akumulácie kyseliny mliečnej, ako aj schopnosťou fermentovať škrob, arabinózu a xylózu. Maximálny počet mikroorganizmov vo variantoch so sušenou hmotou bol zistený na 15. deň, zatiaľ čo vo variantoch siláže z čerstvo narezaných rastlín - na 7. deň.

Vo výrobných podmienkach však nie je jednoduché dosiahnuť vysoký obsah sušiny v pokosenej tráve v dôsledku poveternostných podmienok. Vedci preto už niekoľko rokov hľadajú biologické produkty, ktoré by mohli pozitívne ovplyvniť kvalitu konzervovaného krmiva z čerstvo pokosených a vysušených tráv. Pri silážovaní sušených bylín by sa mali používať iba špeciálne osmotolerantné baktérie mliečneho kvasenia.

2.6. Baktérie kyseliny maslovej

Baktérie kyseliny maslovej (Clostridium sp.) sú spórotvorné, pohyblivé, tyčinkovité anaeróbne maslové baktérie (klostrídie) široko rozšírené v pôde. Prítomnosť klostrídií v siláži je výsledkom kontaminácie pôdy, pretože ich počet na zelenej hmote krmovín je zvyčajne veľmi nízky. Takmer okamžite po naplnení skladu zelenou hmotou sa v prvých dňoch začnú intenzívne množiť baktérie kyseliny maslovej spolu s baktériami kyseliny mliečnej.

Vysoká vlhkosť rastlín vďaka prítomnosti šťavy z rastlinných buniek v drvenej silážnej hmote a anaeróbne podmienky v sile sú ideálnymi podmienkami pre rast klostrídií. Preto do konca prvého dňa ich počet stúpa a následne závisí od intenzity mliečneho kvasenia.

V prípade slabej akumulácie kyseliny mliečnej a zníženia hladiny pH sa baktérie kyseliny maslovej prudko množia a ich počet dosahuje maximum (103–107 buniek/g) za niekoľko dní.

So zvyšujúcou sa vlhkosťou (pri obsahu 15 % sušiny v silážnej hmote) klesá citlivosť klostrídií na kyslosť média už pri pH 4,0.

Je ťažké určiť presnú kritickú hodnotu pH siláže, pri ktorej začína inhibícia Clostridium, pretože závisí nielen od množstva vytvorenej kyseliny mliečnej, ale aj od vody v krmive a od teploty prostredia.

Klostrídie sú citlivé na nedostatok vody. Je dokázané, že s nárastom voľnej vody klesá citlivosť týchto baktérií na kyslosť média.

Teplota krmiva má výrazný vplyv na rast Clostridium. Optimálna teplota pre rast väčšiny týchto baktérií je okolo 37 °C.

Spóry klostrídií sa vyznačujú vysokou tepelnou stabilitou.

Baktérie kyseliny maslovej preto môžu v siláži dlho zotrvávať vo forme spór a keď sa dostanú do priaznivých podmienok pre svoj vývoj, začnú sa množiť. To vysvetľuje nesúlad v biochemických a mikrobiologických parametroch siláže: kyselina maslová chýba a titer maslových baktérií v rovnakých vzorkách krmiva je vysoký.

Štúdium produktov maslovej fermentácie v siláži ukázalo, že existujú dve fyziologické skupiny: sacharolytické a proteolytické klostrídie.

Sacharolytické klostrídie (Cl. butyricum, Cl. pasteurianum) fermentujú najmä mono- a disacharidy. Množstvo vytvorených produktov je rôzne (kyselina maslová, octová a mravčia, butyl, etyl, amyl a propylalkohol, acetón, vodík a oxid uhličitý) a veľmi sa mení. Je to dané druhovou príslušnosťou mikroorganizmov, substrátom, úrovňou pH, teplotou. Pomer oxidu uhličitého a vodíka je zvyčajne 1:1. Predpokladá sa, že kyselina maslová vzniká kondenzáciou dvoch molekúl kyseliny octovej. Priama tvorba kyseliny maslovej nemôže slúžiť ako zdroj energie pre klostrídie. Na udržanie ich vitálnej aktivity je potrebná kyselina octová, ktorá vzniká pri oxidácii acetaldehydu v dôsledku dekarboxylácie kyseliny pyrohroznovej alebo mliečnej.

Sacharolytické klostrídie fermentujúce kyselinu mliečnu a cukor zahŕňajú Cl. butyricum, Cl. tyrobutyricum, Cl. papaputrificum. V siláži s prevahou týchto klostrídií kyselina mliečna a cukor zvyčajne takmer chýbajú. Väčšinou je prítomná kyselina maslová, aj keď často môže byť veľa kyseliny octovej.

С6Н12О6 = С4Н8О2 + 2СО2 + 2Н2.

cukor maslová oxid uhličitý kyslý plyn 2С3Н6О3 = С4Н8О2 + 2СО2 + 2Н2.

Proteolytické klostrídie fermentujú najmä bielkoviny, ale aj aminokyseliny a amidy. V dôsledku katabolizmu aminokyselín vznikajú prchavé mastné kyseliny, medzi ktorými prevláda kyselina octová. Bola zistená významná účasť proteolytických klostrídií na rozklade sacharidov. Silá obsahujú proteolytické klostrídie druhy Cl. sporogenes, Cl. acetobutyricum, Cl. Subterminale, Cl. bifermentas. Množstvo kyseliny maslovej v siláži je spoľahlivým indikátorom rozsahu klostridiálnej aktivity.

Maslová fermentácia vedie k vysokým stratám živín prostredníctvom katabolizmu bielkovín, sacharidov a energie.

Energia sa stráca 7-8 krát viac ako pri mliečnej fermentácii. Okrem toho dochádza k posunu reakcie siláže na neutrálnu stranu v dôsledku tvorby alkalických zlúčenín pri rozklade bielkovín a kyseliny mliečnej. Organoleptické vlastnosti krmiva sa zhoršujú v dôsledku akumulácie kyseliny maslovej, amoniaku a sírovodíka. Pri kŕmení kráv takouto silážou sa spóry Clostridium s mliekom dostávajú do syra a keď v ňom za určitých podmienok vyklíčia, môžu spôsobiť jeho „napučiavanie“ a žltnutie.

Príčinné činidlá maslovej fermentácie sa teda vyznačujú týmito hlavnými fyziologickými a biochemickými vlastnosťami:

1) baktérie kyseliny maslovej, ktoré sú povinnými anaeróbmi, sa začínajú rozvíjať v podmienkach silného zhutnenia silážnej hmoty;

2) rozkladajú cukor, konkurujú baktériám mliečneho kvasenia a pomocou bielkovín a kyseliny mliečnej vedú k tvorbe vysoko alkalických produktov rozkladu bielkovín (amoniak) a toxických amínov;

3) baktérie kyseliny maslovej potrebujú pre svoj vývoj vlhké rastlinné materiály a pri vysokej vlhkosti počiatočnej hmoty majú najväčšiu šancu potlačiť všetky ostatné druhy fermentácie;

4) optimálne teploty pre baktérie kyseliny maslovej sa pohybujú v rozmedzí 35–40 °C, ale ich spóry znášajú vyššie teploty;

5) Baktérie kyseliny maslovej sú citlivé na kyslosť a zastavujú svoju aktivitu pri pH pod 4,2.

Účinné opatrenia proti patogénom maslovej fermentácie sú rýchle okyslenie rastlinnej hmoty, vysušenie vlhkých rastlín. Na aktiváciu mliečnej fermentácie v siláži existujú biologické prípravky na báze baktérií mliečneho kvasenia. Okrem toho boli vyvinuté chemikálie, ktoré majú baktericídny (supresívny) a bakteriostatický (inhibičný) účinok na baktérie kyseliny maslovej.

2.7. Hnilobné baktérie (Bacillus, Pseudomona)

Zástupcovia rodu Bacilli (Bac. mesentericus, Bac. megatherium) sú svojimi fyziologickými a biochemickými vlastnosťami podobní zástupcom klostrídií, ale na rozdiel od nich sú schopní vývoja v aeróbnych podmienkach. Preto patria medzi prvé, ktoré sú zahrnuté do fermentačného procesu a najčastejšie sa vyskytujú v množstve 104–106, ale v niektorých prípadoch (napríklad v rozpore s technológiou) - až 108–109. Tieto mikroorganizmy sú aktívnymi producentmi rôznych hydrolytických enzýmov. Ako živiny využívajú rôzne bielkoviny, sacharidy (glukózu, sacharózu, maltózu atď.) a organické kyseliny.

Značná časť bielkovinového dusíka (až 40% a viac) sa pôsobením bacilov môže premeniť na amínové a amoniakové formy a niektoré aminokyseliny na mono- a diamíny, najmä v podmienkach pomalého okysľovania hmoty. Dekarboxylácia má maximum v kyslom prostredí, pričom k deaminácii dochádza v neutrálnom a zásaditom prostredí. Dekarboxyláciou môžu vzniknúť amíny. Niektoré z nich majú toxické vlastnosti (indol, skatol, metylmerkaptán atď.), A keď sa kŕmia silážou, tieto látky vstupujú do krvného obehu a spôsobujú rôzne choroby a otravy hospodárskych zvierat. Niektoré typy bacilov fermentujú glukózu, pričom tvoria 2,3-butylénglykol, kyselinu octovú, etylalkohol, glycerol, oxid uhličitý a stopové množstvá kyseliny mravčej a jantárovej.

Dôležitou vlastnosťou hnilobných baktérií, ktorá je dôležitá pre procesy prebiehajúce v kŕmnej hmote, je ich schopnosť sporulovať. V niektorých rozložených silážach, najmä kukuričných, sa našli baktérie príbuzné druhu Bacillus. Zjavne sú typické pre silo a nie sú zavedené zvonku (vzduchom). Z mnohých síl sa po ich dlhom skladovaní izolujú bacily, hoci sa v pôvodnej tráve takmer nenachádzajú.

Na základe toho sa predpokladá, že niektoré hnilobné baktérie sa môžu vyvinúť zo spór v anaeróbnych podmienkach.

Na základe vyššie uvedeného sú teda hlavné znaky patogénov hnilobnej fermentácie tieto:

1) hnilobné baktérie nemôžu existovať bez kyslíka, preto hnitie nie je možné v uzavretom sklade;

2) rozkladajú predovšetkým bielkoviny (na amoniak a toxické amíny), ako aj sacharidy a kyselinu mliečnu (na plynné produkty);

3) hnilobné baktérie sa množia pri pH nad 5,5. Pri pomalom okysľovaní krmiva prechádza významná časť bielkovinového dusíka do amínovej a amoniakálnej formy;

4) dôležitou vlastnosťou hnilobných baktérií je ich schopnosť sporulovať. V prípade dlhodobého skladovania a skrmovania siláže, pri ktorej kvasinky a baktérie kyseliny maslovej rozložia väčšinu kyseliny mliečnej alebo bude neutralizovaná produktmi rozkladu bielkovín, môžu začať svoju deštruktívnu činnosť hnilobné baktérie, vyvíjajúce sa zo spór.

Hlavnou podmienkou pre obmedzenie existencie hnilobných baktérií je rýchle plnenie, dobré zhutnenie a spoľahlivé utesnenie sila. Straty spôsobené patogénmi hnilobnej fermentácie je možné znížiť pomocou chemických konzervačných látok a biologických látok.

2.8. Plesne a kvasnice

Oba tieto typy mikroorganizmov patria medzi huby a sú vysoko nežiaducimi zástupcami silážnej mikroflóry, ľahko znášajú kyslú reakciu prostredia (pH 3,2 a nižšie). Keďže plesňové huby (Penicillium, Aspergillus, atď.) sú obligátne aeróby, začnú sa rozvíjať ihneď po naplnení zásobárne, ale s vymiznutím kyslíka sa ich vývoj zastaví.

V správne naplnenom sile s dostatočným stupňom zhutnenia a utesnenia sa tak stane v priebehu niekoľkých hodín. Ak sú v sile plesňové kapsy, znamená to, že vytlačenie vzduchu bolo nedostatočné alebo tesnenie nebolo úplné. Nebezpečenstvo plesní je obzvlášť vysoké pri siláži zo sušeného rastlinného materiálu, pretože takéto krmivo, najmä jeho vrchné vrstvy, sa veľmi ťažko zhutňuje. V zemných golieroch je spoľahlivé tesnenie prakticky nedosiahnuteľné. Takmer 40 % siláže splesnivie; krmivo má rozloženú, mazľavú štruktúru a stáva sa nevhodným na kŕmenie zvierat.

Kvasinky (Hansenula, Pichia, Candida, Saccharomyces, Torulopsis) sa vyvíjajú ihneď po naplnení skladu, keďže ide o fakultatívne anaeróby a môžu sa vyvíjať s malým množstvom kyslíka v siláži. Okrem toho sú vysoko odolné voči teplotným faktorom a nízkym hodnotám pH.

Kvasinkové huby zastavujú svoj vývoj len pri úplnej absencii kyslíka v sile, no v malých množstvách sa ich nachádzajú v povrchových vrstvách sila.

V anaeróbnych podmienkach využívajú jednoduché cukry (glukózu, fruktózu, manózu, sacharózu, galaktózu, rafinózu, maltózu, dextríny) pozdĺž glykolytickej dráhy a vyvíjajú sa v dôsledku oxidácie cukrov a organických kyselín:

C6H12O6 \u003d 2C2H5OH + 2CO2 + 0,12 MJ.

cukor alkohol oxid uhličitý Plné využitie cukrov a organických kyselín vedie k tomu, že kyslé prostredie siláže sa nahrádza zásaditým, vytvárajú sa priaznivé podmienky pre rozvoj maslovej a hnilobnej mikroflóry.

Pri alkoholovom kvasení sa pozorujú veľké energetické straty.

Ak sa počas fermentácie kyseliny mliečnej stratí 3% energie cukru, potom počas fermentácie alkoholu - viac ako polovica. V aeróbnych podmienkach oxidácia sacharidov kvasinkami vedie k produkcii vody a CO2. Niektoré kvasinky využívajú pentózy (D-xylóza, D-ribóza), polysacharidy (škrob).

Negatívnym účinkom kvasiniek v procesoch sekundárnej fermentácie je, že sa vyvíjajú v dôsledku oxidácie organických kyselín, ku ktorej dochádza po úplnom prekvasení za prístupu vzduchu. V dôsledku oxidácie mliečnych a iných organických kyselín je kyslá reakcia média nahradená alkalickou - až do pH 10,0.

V dôsledku toho klesá kvalita siláže z kukurice, ako aj z „hlboko“ sušených bylín, t. j. krmiva s najlepšími ukazovateľmi fermentačných produktov.

Na základe vyššie uvedeného možno plesne a kvasinky charakterizovať takto:

1) plesne a kvasinky sú nežiaducimi predstaviteľmi aeróbnej mikroflóry;

2) negatívnym účinkom plesní a kvasiniek je, že spôsobujú oxidačné štiepenie sacharidov, bielkovín a organických kyselín (vrátane mliečnej);

3) plesne a kvasinky ľahko tolerujú kyslú reakciu prostredia (pH pod 3,0 a dokonca 1,2);

4) plesňové huby emitujú toxíny nebezpečné pre zdravie zvierat a ľudí;

5) kvasinky, ktoré sú pôvodcami procesov sekundárnej fermentácie, vedú k aeróbnej nestabilite síl.

Obmedzenie prístupu vzduchu rýchlou pokládkou, podbíjaním a tesnením, správnym vykopávaním a prikrmovaním sú rozhodujúce faktory, ktoré obmedzujú rozvoj plesní a kvasiniek. Na potlačenie rozvoja patogénov sekundárnej fermentácie sa odporúčajú prípravky s fungistatickou (fungicídnou) aktivitou.

Zhrnutím vyššie uvedeného možno mikroorganizmy v siláži rozdeliť na prospešné (baktérie mliečneho kvasenia) a škodlivé (maslové, hnilobné baktérie, kvasinky a plesne).

Na základe fyziologických a biochemických charakteristík mikroorganizmov nachádzajúcich sa v sile, rýchly pokles pH (do 4,0 alebo menej) inhibuje reprodukciu mnohých nežiaducich mikroorganizmov.

V tomto rozsahu pH spolu s baktériami mliečneho kvasenia môžu existovať iba plesne a kvasinky. Potrebujú však kyslík. Pre úspešné silážovanie je preto potrebné čo najrýchlejšie odstrániť vzduch zo skladu z dôvodu spoľahlivého zhutnenia a rýchleho naplnenia skladu, správneho prístrešku. To poskytuje priaznivé podmienky pre baktérie mliečneho kvasenia (anaeróby).

V ideálnom prípade, teda pri dostatočnom obsahu vo vode rozpustných sacharidov vo východiskovom rastlinnom materiáli a anaeróbnych podmienkach, zaujíma dominantné postavenie mliečna fermentácia. Už za pár dní dosiahne pH svoju optimálnu úroveň, pri ktorej sa zastavia nežiaduce druhy kvasenia.

Pri silážovaní krmovín bohatých na bielkoviny je potrebné ich sušiť alebo použiť chemické a biologické konzervačné prostriedky, ktoré potláčajú (inhibujú) rozvoj nežiadúcich mikroorganizmov a umožňujú získať kvalitné krmivo bez ohľadu na obsah siláže a vlhkosti. pôvodný rastlinný materiál.

Kŕmne suroviny a krmivá počas skladovania sú priaznivou živnou pôdou pre rýchly rast plesní. V dôsledku kolísania teploty vo dne iv noci dochádza k migrácii vlhkosti v sklade, čo prispieva k zrýchlenému rastu plesní a množeniu hmyzu.

Krmivá napadnuté plesňou a hmyzom sú nedostatočne konzumované hospodárskymi zvieratami a vtákmi, spôsobujú depresiu obehového a imunitného systému a narúšajú činnosť obličiek. V konečnom dôsledku sa zhoršuje zdravotný stav a úžitkovosť zvierat a hydiny, zvyšujú sa náklady na ich údržbu a ošetrovanie a znižuje sa ekonomická efektívnosť chovu zvierat. Je známe, že zvieratá jedia plesnivé seno mimoriadne neochotne alebo ho nejedia vôbec. Ako krmivo je nevhodná aj plesnivá siláž a senáž. Jedovaté toxíny vylučované niektorými hubovými kultúrami sa nachádzajú v siláži zo zemných hromád a hlinených síl alebo v horných vrstvách krmovín veľkých silážnych jám so slabým zhutnením a netesným krytom čerstvo pokosenej a najmä vysušenej hmoty.

Huby využívajú na svoj rast množstvo živín. Obsah živín v krmive v dôsledku života kolónie 40 000 húb klesá za jeden týždeň o 1,5–1,8 %; dochádza k zhoršeniu chuti, pretože infekcia obilia niektorými druhmi húb vedie k vzniku charakteristického odpudivého zápachu plesne a nepríjemnej chuti.

Menia sa fyzikálne vlastnosti kŕmnych surovín, čo sa prejavuje tvorbou hustých hrudiek, ktoré komplikujú jeho prepravu a vedú k prekysnutiu obilia v silách; v prítomnosti mykotoxínov, čo vedie k zlému zdravotnému stavu, zakrpateniu zvierat a zníženiu ich produktivity.

Rôzne plesne produkujú rôzne mykotoxíny, pričom niektoré z nich produkujú niekoľko mykotoxínov: Penicillium - ochratoxíny; Fusarium - toxín T-2, zearalenón, DON; Aspergillus – aflatoxíny, ochratoxíny. V tomto prípade je ich negatívny účinok značne posilnený.

Pri tepelnej úprave krmiva sa mykotoxíny neničia a dostávajú sa do tela zvierat s krmivom a hromadia sa v mäse, vajciach a mlieku. Ich prítomnosť v krmive je preto veľkým nebezpečenstvom nielen pre zvieratá, ale aj pre zdravie ľudí, keďže niektoré z mykotoxínov, najmä aflatoxíny, sú karcinogény a ich požitie by malo byť absolútne vylúčené.

Na rast plesňových húb je potrebných niekoľko podmienok:

1) teplota. Optimálna teplota pre rast plesňových húb je v rozmedzí 18–30 °C. Napriek tomu niektoré ich druhy intenzívne rastú a rozmnožujú sa pri teplote 4–8 °C;

2) vlhkosť.

Na zníženie obsahu vlhkosti v zrne sú výrobcovia nútení sušiť ho na stanovené hodnoty. To je spojené s veľkým výdavkom energie a pracovných zdrojov počas veľmi obmedzeného časového obdobia. Avšak aj pri skladovaní obilia so štandardnou vlhkosťou má taký faktor, akým je migrácia vlhkosti, negatívny vplyv na kvalitu zrna počas skladovania.

Takže pri skladovaní obilia, ktoré má počiatočnú vlhkosť asi 13 %, dochádza k migrácii vlhkosti v dôsledku teplotného rozdielu v hornej časti (35 °C) a v spodnej časti (25 °C) skladu. O mesiac neskôr bol obsah vlhkosti zrna na dne 11,8% a na vrchu - 15,5%. V procese skladovania zrna normálnej vlhkosti sa v niektorých oblastiach často vytvárajú optimálne podmienky pre rýchly rast plesní.

Existujú silné lekárske dôkazy o ochorení pľúc u zvierat a pracovníkov, ktorí manipulujú s plesnivým senom a obilím. U ľudí aj zvierat sú spôsobené vdychovaním teplomilných mikroorganizmov (Micropolispora, Thermo-actinomyces, Aspergillus).

Podľa Svetovej zdravotníckej organizácie je asi 25 % svetových zásob obilia kontaminovaných mykotoxínmi, preto je dôležité riešiť ich zdroj – plesne.

Existuje mnoho ďalších potenciálne nebezpečných plesní, ktoré môžu spôsobiť celý rad mykotoxikóz, vrátane zníženej plodnosti, potratov a všeobecné zhoršenie zdravie. Všetky tieto ochorenia spôsobujú mykotoxíny produkované hubami: Aspergillus, Fusarium, Penicillium (aflatoxíny, ceralenón, ochratoxín).

Hlavným dôvodom poklesu kvality kŕmnych zmesí je ich poškodenie plesňami a následne kontaminácia mykotoxínmi.

Huby sa do zmesových krmív dostávajú najmä s obilím a produktmi jeho spracovania, čiastočne sa dodatočne naočkujú pri výrobe, preprave a skladovaní. Keďže ide o mŕtvy substrát, veľmi prístupný pre mikroorganizmy, kŕmne zmesi sú pravdepodobnejšie napadnuté hubami ako obilie. Tomu napomáha jeho vysoká hygroskopickosť, ako aj bohatý prísun živín, najmä v súvislosti s jeho obohatením o vitamíny, stopové prvky a ďalšie prísady.

V dôsledku rastu a rozmnožovania plesňových húb v krmive dochádza k:

Znížená jeho energetická a nutričná hodnota, keďže huby na svoj život využívajú živiny z potravy, ktorú ovplyvnili;

Zhoršenie chutnosti, pretože aj malé množstvo plesní v krmive vytvára prach, nepríjemný zápach a chuť, čo spôsobuje zlú chutnosť krmiva pre zvieratá;

Zmeny fyzikálnych parametrov kŕmnych zmesí prejavujúce sa uvoľňovaním dodatočného množstva vody hubami a spekaním krmiva v dôsledku rastu hubového mycélia;

Kontaminácia krmiva mykotoxínmi produkovanými hubami, čo vedie k zakrpateniu zvierat, zníženiu ich úžitkovosti, konverzii krmiva a spôsobuje trvalú otravu celého dobytka.

Kŕmne zmesi, pozostávajúce z drveného zrna, otrúb, sú úrodnou pôdou pre klíčenie plesní. Čím dlhšia je trvanlivosť surovín, hotového krmiva, tým väčšie je riziko poškodenia plesňou. Za priaznivých podmienok môže dôjsť vo veľmi krátkom čase k výraznej reprodukcii húb, mycélium húb narastie za 1 hodinu o 1 mm, preto je potrebné vykonávať preventívnu liečbu antimykotikami, ktorá je ekonomicky opodstatnenejšia ako boj s plesňami a mykotoxínmi v už plesnivom krmive.

Najpraktickejším a najspoľahlivejším spôsobom ochrany krmiva pred plesňou je použitie prípravkov na báze organických kyselín a ich solí. Inhibujú rast mikroorganizmov okyslením cytoplazmy bunky, čo vedie k bunkovej smrti. Všeobecne uznávaným inhibítorom plesní je kyselina propiónová. Použitie kyseliny propiónovej v čistej forme je však spojené s mnohými ťažkosťami: kyselina silne koroduje kovové časti strojov a mechanizmov, má ostrý štipľavý zápach, prchavosť a môže viesť k vážnym popáleninám personálu, ktorý s ňou pracuje, a ku korózii. kovových častí dopravníkov a miešadiel. V tekutom inhibítore plesní Mycocorm je kyselina propiónová obsiahnutá v pufrovom komplexe špeciálne vyvinutom spoločnosťou Franklin (Holandsko), ktorý umožňuje použitie lieku bez poškodenia zariadenia a personálu. Kyselina propiónová a fosforečná, ktoré sú súčasťou tekutého mykokrmiva, majú určitú úroveň aktivity vo vzťahu k plesniam, kvasinkám a baktériám. Každá z uvedených kyselín má svoje výhody a nevýhody, pokiaľ ide o spektrum mikroorganizmov, ktoré sa majú inhibovať, jednoduchosť manipulácie a cenu. Pri spoločnom použití v optimálnych pomeroch si tieto organické kyseliny zachovávajú svoje výhody a kompenzujú individuálne nevýhody.

3. ROZSAH STRÁT V KRMIVÁCH V KONZERVÁCH,

VZNIKNUTÉ ČINNOSŤOU MIKROORGANIZMOV

Pri zostavovaní bilancie krmiva je potrebné počítať so stratami pri príprave a skladovaní krmiva v konzervách. Existuje mnoho schém, ktoré ukazujú, že celkové straty sú tvorené stratami na poli, skladoch a vyskytujú sa aj počas zberu zelenej hmoty.

Táto prednáška pojednáva o veľkosti strát spôsobených činnosťou mikroorganizmov, ktoré sú často podceňované a pri nekvalifikovanej práci môžu dosiahnuť obrovské rozmery.

3.1. fermentačná strata

Po odumretí rastlinných buniek v naplnenom a dobre zhutnenom sklade začína intenzívny rozklad a premena živín množiacimi sa mikroorganizmami. Dochádza k stratám v dôsledku tvorby kvasných plynov ("odpadov"), stratám v hornej a bočnej vrstve, stratám v dôsledku procesov sekundárnej fermentácie.

Nepretržité plnenie skladovacích zariadení (silo, senáž) môže výrazne znížiť tvorbu plynov. Pri rýchlom naplnení skladu môže byť strata sušiny v dôsledku „odpadu“ 5-9%. Pri rozšírenom plnení môžu zodpovedajúce ukazovatele dosiahnuť 10–13% alebo viac. Preto je kontinuálnym plnením možné znížiť straty z "odpadu" asi o 4-5%.

Malo by sa pamätať na to, že pri slabo zhutnenej senáži sa v dôsledku samozahrievacích procesov stráviteľnosť bielkovín zníži na dvojnásobok.

V nezakrytej silážnej (senážnej) hmote dochádza v hornej a bočnej vrstve k intenzívnemu rozkladu živín. S prístreškom s jednou plevou alebo bez prístrešku môžu byť straty oveľa väčšie. Plesňové huby, ktoré sa vyvíjajú, položia základ pre silný rozklad bielkovín. Produkty rozkladu bielkovín sú zásadité a viažu kyselinu mliečnu. Dochádza aj k priamemu rozkladu kyseliny mliečnej. Tieto procesy vedú k zvýšeniu hladiny pH a zhoršeniu kvality krmiva. Aj keď poškodená vrstva v čase otvorenia skladu nepresahuje 10 cm, treba mať na pamäti, že táto vrstva bola pôvodne hrubá 20–50 cm a siláž pod poškodenou vrstvou sa vyznačuje vysokým pH, obsahuje toxické toxíny a je nevhodný na kŕmenie.zvieratá.

Straty spôsobené procesmi sekundárnej fermentácie môžu dosiahnuť 20-25%. Zistilo sa, že prvú fázu kazenia siláže spôsobujú kvasinky spolu s aeróbnymi baktériami, je spojená s jej zahrievaním, znížením kyslosti. V druhom štádiu kazenia siláže dochádza k následnému napadnutiu plesňou. Takéto jedlo sa považuje za nevhodné, ak obsahuje viac ako 5 x 105 húb. Už po 5 dňoch aeróbneho skladovania, v prípade dlhšieho skrmovania alebo nesprávneho vyskladnenia, sa kukuričná siláž aj s dobrým počiatočným pH 4,1, ale už s 3 107 kvasinkami, vyznačuje astronomicky vysoké číslo kvasinky a plesne Streptomycetcn.

3.2. Kŕmiť mykotoxikózy

Medzi mnohými environmentálnymi faktormi toxické látky Mykotoxíny produkované mikroskopickými hubami priťahujú v poslednom čase čoraz väčšiu pozornosť.

Mykotoxíny sú jedovaté produkty látkovej premeny (metabolizmus) plesní, ktoré sa tvoria na povrchu potravín a krmív. Toxigénne huby sú v prírode mimoriadne rozšírené a za priaznivých podmienok (zvýšená vlhkosť a teplota) môžu infikovať rôzne potraviny, krmivá, priemyselné látky a spôsobiť značné škody v národnom hospodárstve. Konzumáciu potravín a krmív kontaminovaných (kontaminovaných mikroorganizmami) týmito plesňami a mykotoxínmi môžu sprevádzať ťažké ochorenia ľudí a hospodárskych zvierat - mykotoxikózy.

V posledných rokoch je problém mykotoxikóz vo veľkom rozsahu. V Bieloruskej republike, ako aj na celom svete je významná časť vyprodukovaného obilia kontaminovaná mykotoxínmi, ktoré nielen negatívne a deštruktívne vplývajú na telo zvierat, výrazne znižujú parametre produktivity, kvalitu získaných produktov. zvyšujú ekonomické náklady, ale predstavujú aj vážne nebezpečenstvo pre ľudské zdravie.

Konzumácia kontaminovaného krmiva u hydiny vedie k vzniku chronických mykotoxikóz, charakterizovaných širokým spektrom poškodení pečene, obličiek, tráviaceho traktu, dýchacích orgánov, nervový systém, čo v konečnom dôsledku negatívne ovplyvňuje produktivitu a bezpečnosť hospodárskych zvierat. Široká prevalencia tejto negativity si vyžaduje hľadanie nových spôsobov riešenia tohto problému.

Mykotoxikóza je ochorenie, ktoré sa vyskytuje, keď zvieratá jedia rastlinnú potravu napadnutú hubami tvoriacimi toxíny. Mykotoxikózy nie sú infekčné ochorenia, pri ich výskyte v organizme zvierat nedochádza k imunologickej reštrukturalizácii a nevyvíja sa imunita. Mykotoxikózam môžu byť vystavené všetky druhy zvierat, vtákov a rýb, chorí sú aj ľudia.

Celkový počet druhov húb vo svetovej mikroflóre sa pohybuje od 200 do 300 tisíc druhov, toxigénnych - od 100 do 150 druhov. Najväčším nebezpečenstvom pre zvieratá a ľudí sú krmivá a potraviny kontaminované metabolitmi húb, ktoré patria do dvoch skupín.

Prvou skupinou sú takzvané soprofyty (skladové huby) rodov Aspergillus a Penicillium. Ide najmä o huby, ktoré nie sú schopné infikovať vegetatívne rastliny a dostať sa do obilia, objemového krmiva a potravín najmä pri ich zbere, skladovaní a príprave na kŕmenie.

Bola zaznamenaná určitá substrátová špecifickosť toxicky tvoriacich mykomycét: druhy rodu Fusarium infikujú najmä obilné zrná; Aspergillus – strukoviny a kŕmne zložky; Stachibotrys altemans, Dendrodochium toxicum ovplyvňujú objemové krmivo.

Pre rozvoj húb, ktoré produkujú mykotoxíny, sú potrebné určité podmienky. Námeľ a sneť infikujú rastliny vo vegetatívnom štádiu. Sclerotium sa vyvíja v pôde pri teplote 22–26 °C a vlhkosti 25–30 %. Teplota a vlhkosť sú najdôležitejšie faktory, ktoré podporujú rast a rozmnožovanie toxických húb. Optimálna vlhkosť vzduchu je 25–30 %, najpriaznivejšia teplota 25–50 °C. Na objemové krmivá (seno s vlhkosťou 16%, slama - 15% počas skladovania) huby nepôsobia.

Hrubé krmivo s vysokou vlhkosťou sa samo ohrieva (prispievajú k tomu mikroorganizmy) a vytvárajú priaznivé podmienky pre rozvoj mykomycét.

Samozahrievanie nie je len vláknina, ale aj obilie, ako aj produkty jeho spracovania (múka, kŕmna zmes, otruby, obilný odpad atď.).

Veľmi dôležitým bodom je izolácia a štúdium mykotoxínov. Podľa mnohých vedcov sa podarilo izolovať a pomenovať 80 až 2 000 rôznych mykotoxínov, z ktorých 47 je vysoko toxických a 15 má karcinogénne a mutagénne vlastnosti (aflatoxíny B a M, ochratoxín A, zearalenón, T-2 toxín, patulín, cyklopiazonic a kyseliny penicilové).a niektoré ďalšie). Prirodzene uvoľňované zahŕňajú aflatoxíny, ochratoxín A, patulín, T-2 toxín, kyselinu penicilínovú atď.

Prevažná väčšina mykotoxínov sú exotoxíny, t.j.

uvoľnené do substrátu, na ktorom huba rastie. Mykotoxíny môžu zostať v krmive ešte dlho po smrti huby, ktorá ich vytvorila. Preto vzhľad jedla nemôže vždy slúžiť ako kritérium jeho bezpečnosti. Mykotoxíny sú zlúčeniny s nízkou molekulovou hmotnosťou. Sú odolné voči vysokým teplotám, neničia sa úpravou horúcou parou, sušením, dlhodobým skladovaním, pôsobením kyselín a zásad. Makroorganizmus proti nim nevytvára protilátky, t.j. zvieratá a ľudia zostávajú citliví na mykotoxíny počas celého života.

Najčastejšími mykotoxikózami u zvierat sú aspergilotoxikóza, stachybotryotoxikóza, fuzariotoxikóza, dendrodochiotoxikóza, myrotecytoxikóza, klavicentoxikóza, penicilotoxikóza, rizopusotoxikóza, toxikóza spôsobená sneťou.

Stanovujú sa ich chemické vzorce, fyzikálne a chemické vlastnosti, mechanizmus účinku; niektoré krajiny vypočítali minimálne prípustné koncentrácie týchto mykotoxínov v krmivách pre odlišné typy hospodárske zvieratá a hydina; ako aj vyvinuté kvantitatívne laboratórne metódy na stanovenie týchto látok v rôznych látkach. Skúmajú sa aj ďalšie, menej prebádané mykotoxíny, ako sú ergotoxíny a pod., ktoré tiež spôsobujú značné škody na chove hospodárskych zvierat a hydiny.

Je všeobecne známou skutočnosťou, že mykotoxíny zavedené v chemicky čistej forme vykazujú toxické vlastnosti v oveľa menšom rozsahu ako rovnaké množstvo mykotoxínu, ale produkovaného v prirodzených podmienkach. Je to spôsobené tým, že mikroskopické huby v procese života produkujú rôzne toxíny, ktorých počet môže dosiahnuť niekoľko desiatok a tieto toxíny vykazujú kombinovaný toxický účinok.

Laboratóriá dokážu odhaliť len malú časť známych mykotoxínov. Synergický efekt mykotoxínov bol študovaný v minimálnej miere, aj keď v praxi má veľký význam.

Náročnosť spočíva v jedinečnosti a nepredvídateľnosti kvalitatívneho a kvantitatívne zloženie mykotoxíny syntetizované rôznymi druhmi húb za rôznych podmienok.

Známe sú aj kumulatívne vlastnosti mykotoxínov. V prípade prítomnosti mykotoxínov v krmivách v množstvách pod úrovňou citlivosti metódy stanovenia vzniká ilúzia ich neprítomnosti a teda aj bezpečnosti krmiva. V priebehu niekoľkých dní od skrmovania takýchto krmív však v dôsledku kumulácie dosiahne dávka vzniknutých toxínov kritickú úroveň a prejaví sa nejakým spôsobom, najmä znížením chuti do jedla, celkovou depresiou, zlým trávením atď. v drvivej väčšine prípadov sa bude príčina týchto príznakov hľadať v čomkoľvek, len nie v pôsobení mykotoxínov.

Ďalším možným vývojom, ktorý môže zostať dlho nepovšimnutý, je, že mykotoxíny, keď sa hromadia, postupne zničia imunitný systém zvieraťa alebo vtáka. Takéto pôsobenie je typické pre takmer všetky mykotoxíny, no jeho detekcia bez použitia špeciálnych metód je takmer nemožná. Podobný obraz sa pozoruje, keď sa toxíny nachádzajú v krmive v maximálnych prípustných koncentráciách. Tieto výsledky poukazujú na reálnu možnosť výskytu mnohých ďalších mykotoxínov v krmive, ktoré laboratórne testy nedokážu odhaliť.

Mykotoxíny majú jednu spoločnú vlastnosť – sú to biocídy, ktoré ničia živé bunky. Z hľadiska iných vlastností, vrátane fyzikálno-chemických, sa mykotoxíny veľmi výrazne líšia, čo znemožňuje vyvinúť efektívna metóda bojovať s nimi.

Najbežnejšou metódou je dnes adsorpcia mykotoxínov adsorbentmi organického alebo anorganického pôvodu. Metóda je založená na fyzikálnych vlastnostiach molekúl mykotoxínov - ich polarite a veľkosti molekúl. Preto adsorbenty rôzneho charakteru adsorbujú mykotoxíny rôznymi spôsobmi.

Adsorpčná metóda účinne odstraňuje polárne mykotoxíny (ide najmä o aflatoxíny, do určitej miery fumonizíny).

Zároveň niektoré adsorbenty nepolárne toxíny prakticky nesorbujú, zatiaľ čo iné sú sorbované nedostatočne efektívne.

Stupeň neutralizácie mykotoxínov závisí aj od adsorpčnej kapacity adsorbenta. Tento indikátor a stupeň poškodenia krmiva určujú rýchlosť zavádzania adsorbentu do krmiva. Podstatnými vlastnosťami adsorbentov je schopnosť pôsobiť v širokom rozsahu pH a nevratnosť viazania mykotoxínov. Je známe, že mykotoxíny môžu byť adsorbované na adsorbente v žalúdku a desorbované v alkalickom prostredí čreva. V dôsledku toho bude účinnosť takéhoto adsorbenta pochybná. Niektoré adsorbenty majú tiež schopnosť adsorbovať živiny, vitamíny a mikroelementy.

Pri hodnotení účinnosti adsorbentov sú ťažkosti, čo značne komplikuje ich výber a získanie objektívnych výsledkov. Väčšina klasických metód in vitro sa reálnym podmienkam tráviaceho traktu nemôže ani len priblížiť.

Experimenty in vivo sú príliš zložité a ťažko replikovateľné.

Preto pokračuje hľadanie modelov, ktoré by umožnili reprodukovať podmienky čo najbližšie prírode a umožnili získať objektívnejšie výsledky.

Väčšina popredných toxikológov sa domnieva, že účinná kontrola mykotoxínov je možná len pomocou niekoľkých doplnkových spôsobov ich eliminácie z krmiva, ktoré majú rôzne mechanizmy účinku a sú namierené proti rôznym skupinám toxínov. Výskum v tejto oblasti je veľmi intenzívny. Hľadanie optimálnych anorganických a organických adsorbentov pokračuje.

V súčasnosti boli vytvorené hydratované sodné, vápenaté, hlinitokremičitany, ktoré sú uznávané ako najlepšie z anorganických adsorbentov. Dokázali to laboratórne a výrobné štúdie mnohých nezávislých vedeckých centier.

Novým smerom je neutralizácia mykotoxínov. Neutralizácia toxického účinku mykotoxínov pomocou enzýmov je prirodzený spôsob boja mikroorganizmov o existenciu. Početné štúdie ukázali, že je výborný na neutralizáciu mykotoxínov v organizme hospodárskych zvierat a hydiny.

Špeciálne vybrané enzýmy upravujú mykotoxíny na bezpečné látky pôsobením na tú časť molekuly, ktorá je zodpovedná za toxický účinok. Tento prístup je dôležitý a možno aj jediný účinný pre nepolárne mykotoxíny, ktoré prakticky nie sú viazané adsorbentmi (trichotecény, zearalenón, ochratoxíny).

4. MIKROBIOLOGICKÁ ANALÝZA KRMÍV

Mitroshenková A.E. Povolžská štátna sociálno-humanitárna akadémia Samara, Rusko EKOLOGICKÝ A BIOLOGICKÝ CHARAK...»

"Program odboru" Biológia "Autori: prof. G.N. Ogureeva, prof. V.M. Galushin, prof. A.V. Bobrov Ciele osvojenia si disciplíny sú: získanie základných vedomostí o organizácii živých organizmov a znakoch ich fungovania; prijímať...»

"Anotácie k pracovným programom odborov hlavného odborného vzdelávacieho programu vysokoškolského vzdelávania v smere prípravy 03.03.02 Fyzika so zameraním (profil)" Fyzika kondenzovaného skupenstva látok "B1.B.1 Cudzí jazyk Tento disciplína...“

„Ja. Anotácia Predmet "Fyziológia rastlín" je jednou zo základných biologických disciplín. Štúdium fyziológie rastlín v súčasnosti nadobúda čoraz väčší teoretický a praktický význam vďaka obrovským úspechom molekulárnych ... " MDT 81`27 POLITICKÁ LINGVISTIKA: VEDA - VEDECKÁ ... " IONTY " Ekológia a manažment prírody " Biologická fakulta ekológie Katedra morfológie a anatómie vyšších rastlín Otázky...» «Štátna agrárna univerzita v Saratove pomenovaná po NI Vavilovovi» FYZIOLÓGIA krátky kurz prednášok pre doktorandov 3. ročníka Smer prípravy 06.06.01. Biologické vedy Pr... "modernej "veľkej" ekológie - jej teórie, zákony, pravidlá ... "UDK 633.491:631.535 / 544.43 VPLYV RASTLÍN HOSTITELIA VÍRUSOV ZEMIAKOV A LETO APHIS - VOZIDLÁ VÍRUSOV NA NÁROKU ZEMIAKY V ORIGINÁLNEJ SEMINÁRI Ryabtseva T.V. ., Kulikova V.I. Výskumný ústav poľnohospodárstva GNU Kemerovo Ruskej poľnohospodárskej akadémie, Kemerovo ... "

"jeden. Vysvetlivka Program vstupného testu Program vstupného testu obsahuje materiály na preverenie vedomostí a kompetencií vstupujúcich na magisterské štúdium v smere prípravy 49.04.01 Telesná kultúra "Zdravotná a biologická podpora telesnej kultúry ..."

„Pri vývoji programu akademickej disciplíny „Medicko-biologické základy bezpečnosti“ sa vychádzalo z: Federálny štátny vzdelávací štandard vyššieho odborného vzdelávania v smere prípravy bakalárov dňa 18. marca 02 (241000.62) „Energia a procesy šetriace zdroje v chemickej technológii, petrochémii a biotechnológii“, schválené Ministerstvom školstva a vedy dňa 24. januára .. .“

2017 www.site - "Bezplatná elektronická knižnica - rôzne materiály"

Materiály tejto stránky sú zverejnené na kontrolu, všetky práva patria ich autorom.
Ak nesúhlasíte s tým, aby bol váš materiál zverejnený na tejto stránke, napíšte nám, odstránime ho do 1-2 pracovných dní.

Epifytická mikroflóra zrna a jej zmeny počas skladovania krmív
Na povrchu zrna žije rôznorodá mikroflóra. Niektoré mikroorganizmy vstupujú z rizosféry, niektoré sú prinesené prachom a hmyzom. Na zrne, ako aj na celom povrchu rastlín sa však vyvíja len niekoľko mikroorganizmov, takzvaných epifytov. Epifytické mikroorganizmy, ktoré sa rozmnožujú na povrchu stoniek, listov a semien rastlín, sa nazývajú mikroorganizmy phyllo-sfera. Epifyty sa živia produktmi exosmózy rastlín. Životné podmienky epifytických baktérií sú zvláštne. Vyhovujú im malé zásoby živín na povrchu rastlín, sú odolné voči vysokým koncentráciám fytoncídov a odolávajú periodickým výkyvom vlhkosti. Preto je ich počet malý a druhové zloženie celkom konštantné. Viac ako 90 % epifytických mikroorganizmov sú hnilobné baktérie. Epifytná mikroflóra je zastúpená najmä baktériami, ktoré nenesú spóry. Väčšinu bakteriálnej populácie zrna tvoria tyčinky bez spór rodu Pseudomonas, aktívne sa vyvíjajúce na povrchu rastlín. Zvlášť častá je Pseudomonas herbicola (Erwinia herbicola), ktorá vytvára zlatožlté kolónie na hustých médiách. Existujú aj Pseudomonas fluorescens, mikrokoky, baktérie mliečneho kvasenia, kvasinky. Bacily a mikroskopické huby tvoria malé percento.
Za určitých podmienok môžu byť pre rastliny užitočné epifytické mikroorganizmy, ktoré zabraňujú prenikaniu parazitov do rastlinných tkanív.
Pri skladovaní obilia môžu hrať negatívnu úlohu epifytické mikroorganizmy. V zrelom zrne je voda vo viazanom stave a je pre mikroorganizmy nedostupná. Na takomto zrnku sú v stave anabiózy (odpočinku). Vývoj mikroorganizmov na zrne a tým aj ich bezpečnosť rozhodujúcim spôsobom ovplyvňujú: vlhkosť, teplota, stupeň prevzdušnenia, celistvosť zrna a stav jeho krycích tkanív. Na zrne s vysokou vlhkosťou sa mikroorganizmy množia tým rýchlejšie, čím vyššia je teplota.
Rozvoj mikrobiologických procesov v skladovanom obilí s vysokou vlhkosťou vedie k citeľnému a niekedy veľmi výraznému zvýšeniu teploty. Tento jav sa nazýva termogenéza.
Samozahrievanie obilia vedie k zmene mikroflóry. Epifytická mikroflóra charakteristická pre zrno zmizne. Najprv sa hojne množia nepigmentované tyčinky bez spór, ktoré vytláčajú Erwinia herbicola, neskôr sa objavujú žiaruvzdorné (termotolerantné) mikrokoky, ktoré tvoria na hustých médiách najčastejšie malé biele ploché kolónie, plesne a aktinomycéty. Ďalší rozvoj procesu samoohrievania (nad 40-50°C) podporuje rozvoj spórotvorných a termofilných baktérií.
So zmenami samoohrievania sa mení aj druhové zloženie plesňových húb. Druhy Penicillium, ktoré dominovali na začiatku, sú nahradené druhmi Aspergillus.
Podľa druhového zloženia mikroflóry sa teda dá posúdiť nielen to, či zrno podliehalo samoohrevu, ale aj to, ako ďaleko tento proces zašiel. Prevaha Ertioinia herbicola v mikrobiálnej cenóze zrna je indikátorom jeho dobrých vlastností. Veľký počet spórotvorné baktérie a huby naznačuje stratu klíčivosti semien.
Priaznivé podmienky pre vývoj mikroorganizmov na zrne vedú k hromadeniu nimi uvoľňovaných toxínov. V dôsledku toho často dochádza k otravám krmiva, keď sa takéto zrno kŕmi hospodárskymi zvieratami a hydinou.
Správne skladovanie obilia by sa teda malo obmedziť na zabránenie rastu mikroorganizmov na ňom.
Na kvantitatívne zistenie mikroorganizmov na zrne sa 5 g vzorka vloží do banky s 50 ml sterilnej vody z vodovodu a 2 až 3 g piesku. Banka sa pretrepáva krúživými rotačnými pohybmi počas 10 minút. Zo získaného extraktu sa pripravia nasledujúce riedenia (10~2; 10_3; 10-4). Samostatné sterilné Mohrove pipety odoberte 10 ml suspenzie a preneste ju do baniek obsahujúcich 90 ml sterilnej vody z vodovodu. Potom sa 1 ml suspenzie príslušného riedenia odoberie z každej banky do sterilných Petriho misiek v dvoch vyhotoveniach. Do každej Petriho misky nalejte 1 skúmavku roztavenej, ale vopred vychladenej na 50 °C MPA. Doštičky sa inkubujú pri 30 ° C. Spolu s MPA sa používajú elektívne médiá opísané v časti Silo analýza.
Po 3-5 dňoch inkubácie sa spočíta celkový počet kolónií pestovaných na MPA v miskách a vypočíta sa počet mikroorganizmov na 1 g zrna.
Na určenie kvalitatívneho zloženia mikroflóry sa zrná kolónie zoskupia podľa kultúrnych charakteristík, z každej skupiny kolónií sa pripravia prípravky, zistí sa príslušnosť mikroorganizmov k rodu alebo rodine a počet baktérií každej skupiny. sa určuje ako percento z celkového počtu mikroorganizmov.
Na identifikáciu sa izolované kultúry mikroorganizmov purifikujú.
Na základe mikrobiologického rozboru sa urobí záver o kvalite zrna.
Na čerstvom kvalitnom zrne prevláda (až 80 %) Erwinia herbicola, ktorá vytvára lesklé oranžové kolónie. Existujú Pseudomonas fluorescens, ktoré tvoria žltkasto-zelenkasté fluorescenčné kolónie, nepigmentované tyčinky netvoriace spóry, kvasinky (kolónie sú lesklé, vypuklé, často sfarbené do ružových tónov). Pri počítaní na mladinovom agare s kriedou sa zisťujú baktérie mliečneho kvasenia, ktoré tvoria šošovicovité malé kolónie so zónami rozpúšťania kriedy.
Erwinia herbicola, Pseudomas fluorescens sa nezistili na zatuchnutom zrne skladovanom v podmienkach vysokej vlhkosti. Nachádzajú sa mikrokoky, ktoré tvoria malé biele lesklé ploché kolónie, tyčinky tvoriace spóry, aktinomycéty, ako aj tyčinky bez spór. Pri počítaní s mladinovým agarom sa zistí značný počet húb, patriacich najmä do rodu Penicillium, ako aj Aspergillus.
Materiály a vybavenie. Zrno v bankách je čerstvé a zatuchnuté, skladované v podmienkach vysokej vlhkosti. Váhy a závažia. Okuliare na hodinky. Banky so sterilnou vodou (90 ml každá), banky so sterilnou vodou (50 ml každá) a pieskom. Sterilné pipety Mora 10 ml a 1 ml. Sterilné Petriho misky. MPA v skúmavkách a bankách. Vodný kúpeľ, statív. Mikroskopy a všetko, čo potrebujete pre mikroskopiu.
ANALÝZA SILO
Pri silážovaní krmovín zohrávajú dôležitú úlohu baktérie mliečneho kvasenia žijúce na rastlinách. Silážovanie je založené na mliečnej fermentácii. Baktérie mliečneho kvasenia fermentujú cukry silážovaných rastlín na kyselinu mliečnu a čiastočne kyselinu octovú, ktoré brzdia rozvoj hnilobných, maslových a iných nežiaducich baktérií, ktoré kazia krmivo. Baktérie mliečneho kvasenia znižujú pH krmiva na 4,2-
Ak sa kyslosť siláže z jedného alebo druhého dôvodu zníži (pH bude vyššie ako 4,5-4,7), vytvoria sa podmienky priaznivé pre životne dôležitú aktivitu mikroorganizmov škodlivých pre zachovanie kbpma.
Hromadí sa v ňom zapáchajúca kyselina maslová, amíny, amoniak a ďalšie produkty.
Na zabezpečenie normálneho vývoja baktérií mliečneho kvasenia pri silážovaní je potrebný dostatočný obsah cukru v silážnych rastlinách a izolácia krmiva od vzduchu, t.j. vytvorenie anaeróbnych podmienok.
Plesňové huby tolerujú silné prekyslenie, ale sú prísne aeróbne, preto sa nemôžu množiť v dobre utlačených, zakrytých, fermentovaných potravinách.
Ak budete v procese silážovania sledovať rozklad cukru a tvorbu organických kyselín, môžete vidieť, že s poklesom cukru sa množstvo organických kyselín zvyšuje. Pokles pH však nezávisí len od množstva kyseliny mliečnej a octovej, ale aj od pufrovacej kapacity rastlinného materiálu, ktorá zase závisí od bielkovín a solí. Čím väčšia je tlmivosť rastlinnej hmoty, tým viac kyselín je potrebných na zníženie pH krmiva, t.j. čím viac tlmivého materiálu viaže, neutralizuje časť kyseliny mliečnej (vodíkové ióny). Preto, napriek akumulácii kyseliny, pH média takmer nikdy neklesne, kým sa nespotrebuje všetok tlmivý materiál. Kyseliny viazané tlmivým materiálom tvoria v sile takzvané viazané kyseliny. Viac pufrovaná surovina na výrobu siláže dobrej kvality by mala mať viac cukrov ako menej pufrovaná. Silážna kapacita rastlín je teda určená aj špecifickými tlmivými vlastnosťami.
Pufrovacia kapacita rastlinnej hmoty sa zisťuje titrovaním rozdrvenej rastlinnej hmoty 0,1 N roztokom kyseliny mliečnej na pH 4,0. Zistí sa, koľko kyseliny mliečnej je potrebné na posunutie pH na 4,0. Keďže sa spotrebuje približne 60 % na tvorbu mliečnych kŕmnych cukrov sa potom po výpočte 100 % určí takzvané cukorné minimum pre daný rastlinný materiál, t.j. najmenšie množstvo cukru potrebné na vytvorenie takého množstva kyseliny mliečnej a octovej, aby sa posunul pH na 4,0.
Rastliny sú dobre silážované, ak majú veľa cukru a minimum cukru je malé. Ak skutočný
Ak sa obsah cukru v rastlinách rovná približne minimu cukru, potom sú zle silážované a najmenšia odchýlka v silážnom procese povedie k poškodeniu siláže. Ak je skutočný obsah cukru nižší ako minimum cukru, potom takéto rastliny nie sú silážované.
Silážovaním sa zachovajú kvety a listy, ktoré obsahujú najviac živín. Strata pevných látok pri správnom silážovaní nepresahuje 10-15%. Dobrá siláž sa vyznačuje týmito ukazovateľmi: farba - olivovo zelená
(len mierne sa mení), vôňa je príjemná (namočené jablká, pečený chlieb), pH 4-4,2, celková kyslosť 2-2,5% (v prepočte na kyselinu mliečnu), vlhkosť - 70%. Mikroflóru dobrej siláže predstavujú bacily mliečneho kvasenia a streptokoky mliečneho kvasenia, v malom množstve sa často vyskytujú kvasinky. Posledne menované tvoria estery, ktoré dodávajú siláži príjemnú vôňu a obohacujú krmivo o bielkoviny a vitamíny. Kvasinky však vo veľkom množstve znehodnocujú kvalitu siláže – znižujú jej kyslosť, keďže v konzumácii cukru sú konkurentmi mliečnych baktérií.
V prvom období po nakladaní siláže sa rýchlo rozvíja mikroflóra zmiešanej fázy fermentácie, zvyčajne prítomná na povrchu zdravých rastlín: hnilobné baktérie (hlavne tyčinky netvoriace spóry), baktérie skupiny Escherichia coli, maslové baktérie , atď. Pri okyslení krmiva sú nahradené mliečnymi streptokokmi a potom kyselinovzdornejšími tyčinkami kyseliny mliečnej. Po dvoch týždňoch (s poklesom pH na 4,0 a nižšie) sú mikrobiologické procesy v sile v podstate ukončené.
Na analýzu sa odoberie priemerná vzorka siláže z konca výkopu, jám alebo zemných golierov. Za týmto účelom po odstránení vrchnej vrstvy sterilným nožom vyrežte kocky pozdĺž strednej línie goliera s intervalom 1 m. Vložia sa do sterilnej sklenenej nádoby s objemom 1 až 2 litre s zemnú zátku tak, aby silo bolo tesne a po vrch. Vzorky sa zmiešajú v sterilnom kryštalizátore, nasekajú sa sterilnými nožnicami a odvážia sa na analýzu.
Štúdia sa odporúča vykonať najneskôr deň po odbere vzoriek.
Mikroskopické štúdium mikroflóry siláže
Na zoznámenie sa s mikroflórou siláže sa z nej pripraví prípravok nasledovne. Vezmite siláž pomocou pinzety a pevne ju pritlačte na podložné sklo bez pridania vody, pričom sa snažte zanechať na skle odtlačok. Droga sa suší na vzduchu, fixuje sa na plameni a farbí sa metylénovou modrou (2-3 min). Po zmytí farbiva vodou z vodovodu a vysušení mimo plameňa sa farbivo mikroskopuje ponorným systémom.
Prípravok odhaľuje tenké tyčinky, ktoré netvoria spóry, rôznej veľkosti (baktérie mliečneho kvasenia) a streptokoky kyseliny mliečnej. Lactobacterium plantarum, homofermentatívne mezofilné "krátke tyčinky, často usporiadané v paralelných radoch, medzi nimi zvyčajne prevládajú. Niekedy sa vyskytujú pučiace bunky kvasiniek. Baktérie tvoriace spóry sú zriedkavé. V nekvalitnej siláži sú tyčinky tvoriace spóry (baktérie kyseliny maslovej, aeróbne hnilobné baktérie ), ako aj plesňové huby.
Kvantifikácia mikroorganizmov v siláži
5 g vzorka siláže sa umiestni do banky s 50 ml sterilnej vody z vodovodu a 2 – 3 g piesku. Banka sa pretrepáva krúživými rotačnými pohybmi počas 10 minút. Z výsledného extraktu sa pripravia následné riedenia (10-2; 10+ 10+ 10+ 10~6) a potom sa z príslušných riedení vysejú na elektívne médiá, 1 ml suspenzie na hĺbkovú inokuláciu, 0,05 ml suspenzie na povrchovú inokuláciu . Plodiny sa uchovávajú pri teplote 28 °C.
Stanovenie počtu baktérií mliečneho kvasenia sa vykonáva na mladinovom agare s kriedou alebo kapustovom agare s kriedou (média 1, 1a), ako aj na kapustovom agare s alkoholom a kriedou (médium 2) - hlboký výsev. Okolo kolónií baktérií mliečneho kvasenia sa v dôsledku akumulácie kyseliny mliečnej vytvárajú zóny rozpúšťania kriedy (obr. 37).
Kolónie baktérií mliečneho kvasenia sa počítajú na mladinovom agare s kriedou a kapustovom agare s kriedou.
6. deň a na kapustovom "agare s alkoholom a kriedou - na 7.-10. deň. Médium 2 je potrebné na identifikáciu baktérií mliečneho kvasenia v zložení epifytnej mikroflóry pôvodnej rastlinnej hmoty, keďže alkohol inhibuje rast cudzej mikroflóry Množstvo cudzej mikroflóry (aeróbne hnilobné mikroorganizmy) sa stanoví hĺbkovou inokuláciou na peptónovom agare (médium 3) Kolónie sa spočítajú na 5-

Ryža. 37. Zóny rozpúšťania kriedy okolo kolónií baktérií mliečneho kvasenia v siláži.
7. deň.
Počet mikroskopických húb a kvasiniek sa stanoví na mladinovom agare so streptomycínom (médium 4) povrchovou inokuláciou. Kolónie sa počítajú na 3. – 4. deň (v prípade potreby opäť na 7. – 8. deň).
Titer maslových baktérií je stanovený na kvapalnom médiu Emtsev (médium 5a) a zemiakovom médiu (médium 5). Na stanovenie počtu spór baktérií kyseliny maslovej sa očkovanie uskutoční zo suspenzie po pasterizácii počas 10 minút pri 75 °C. Výsledky analýzy sa zaznamenávajú podľa intenzity vývoja plynu (kúsky zemiakov plávajú na hladinu kvapaliny) a titer maslových baktérií a ich spór sa určuje metódou limitných riedení podľa McCreadyho.
Aeróbne proteolytické baktérie sa počítajú v mäsovo-peptónovom bujóne (médium 6) nahromadením plynu v plavákoch. Plodiny sa uchovávajú pri teplote 28 °C počas dvoch týždňov.
Pri analýze síl z tráv pestovaných na pozadí vysokých dávok dusíkatých hnojív sa denitrifikačné baktérie počítajú aj na médium Giltai (médium 7). Plodiny sa uchovávajú 10 až 12 dní pri teplote 28 °C. Denitrifikátory sa počítajú podľa intenzity vývoja plynu a zmeny farby indikátora.
Pri rozbore siláže sa berú do úvahy aj spóry aeróbnych hnilobných bacilov. Na hustom médiu (médium 8)
vykonať povrchové siatie. Poháriky sa inkubujú pri 28 °C, počet kolónií sa vykoná na 4. deň.
Baktérie skupiny Escherichia coli sa počítajú na Kesslerovom alebo Bulirovom médiu na vývoj plynu a jeho akumuláciu v plavákoch. Skúmavky sa inkubujú 48 hodín pri 40-42 °C.
Zloženie voliteľných médií
Streda 1. Mladinový agar s kriedou. Sladina zriedená na 3% podľa Eallinga - 1 l, agar - 20-25 g, sterilná krieda - 30 g Sterilizované pri 0,5 atm 30 minút.
Streda 1a. Kapustový agar s kriedou. Kapustový vývar - 900 ml, kvasnicový extrakt - 100 ml, peptón - 10 g, glukóza - 20 g, octan sodný - 3,35 g, síran manganatý - 0,025 g, agar - 15-20 g.
Do baniek sa pridáva sterilná krieda v množstve 5 g na 200 ml média. Sterilizujte pri 0,5 atm počas 30 minút.
Streda 2. Kapustový agar s alkoholom a kriedou. Do média roztopeného a ochladeného na 50 °C sa pridá 20 ml etylalkoholu (96 %) na 200 ml média, dôkladne sa pretrepe a naleje do Petriho misiek s inokulom.
Streda 3. Peptónový agar. . Peptón - 5 g, K2HPO4 - 1 g,. KH2PO4 - 0,5 g, MgSOi - 0,5 g, NaCl - stopy, voda z vodovodu - 1 l, dobre premytý agar - 15 - 20 g Sterilizované pri 1 atm 20 minút.
Streda 4. Mladinový agar so streptomycínom. Sladina zriedená na 3% podľa Ballinga - 1 l, agar - 25 g Sterilizované pri 0,5 atm 30 minút. Pred naliatím média do Petriho misiek pridajte do mladiny 80-100 jednotiek agao mladiny. streptomycín na mililiter média.
Streda 4a. Okyslený mladinový agar. Sladina zriedená na 3% podľa Ballinga - 1 l, agar - 20-25 g Sterilizované pri 0,5 atm 30 minút. Pred naliatím média do Petriho misiek sa do roztopeného mladinového agaru pridajú 2 ml kyseliny mliečnej (na 1 liter média), povarenej 10 minút vo vodnom kúpeli.
Streda 5. Zemiaková stredná s kriedou. Do skúmaviek sa pridá sterilná krieda (na hrot skalpela), 8-10 zemiakových kociek s veľkosťou 2-3 mm sa zaleje vodou z vodovodu do s / 4 objemu - skúmavky. Sterilizujte pri 1 atm počas 30 minút.
Streda 5 hod. Zemiakový škrob - 20 g, peptón - 5 g, kvasnicový autolyzát - 0,2 mg / l, KH2P04 - 0,5 g, K2HPO4 - 0,5 g, MgSC> 4 - 0,5 g, NaCl - 0,5 g, FeSO4 - 0,01 g, MnS04 01 g, CaCO3 - 10 g, zmes stopových prvkov č.M.V.Fedorov - 1ml, destilovaná voda - 1l, kyselina tnoglykolová - 0,05%, neutrálna - 0,004%) pH 7,4-7,5. Médium sa sterilizuje pri -0,5 atm počas 30 minút. Teplota inkubácie plodín je 30-35°C.
Streda 6. Mäsovo-peptónový vývar. Peptón - 10 g, NaCl - 4 g, mäsový vývar - 1 l. Nalejte do skúmaviek s plavákmi do objemu 3/". Sterilizujte pri 1 atm 20 minút.
Streda 7. Giltai Streda (upravené). Citran sodný - 2 g, KNO3 - 1 g, KH2P04 - 1 g, K2NR04 - 1 g, MgS04 -
1 g, CaCl2 - 0,2 g, FeCl3 - stopy, destilovaná voda - 1 l,
1% roztok brómtymolovej modrej (pH 6,8-7,0). Sterilizujte prn 1 atm 20 minút.
Streda 8. Mäso-peptónový agar a sladinový agar 1: 1. Sterilizovať pri. 0,5 atm počas 30 minút.
Streda 9. Kesslerova streda. Do 1 litra vody z vodovodu pridajte 50 ml čerstvej volskej žlče a 10 g peptónu. Zmes sa varí 15 minút vo vodnom kúpeli, pretrepáva sa. Keď sa peptoi rozpustí, prefiltruje sa cez vatu, potom sa pridá 10 g laktózy. Po rozpustení laktózy sa nastaví mierne alkalická reakcia (pH 7,6) a 4 ml 1% vodný roztok genciánovou violeťou v množstve 1 g suchej farby na 25 litrov média. Kvapalina sa naleje do skúmaviek s plavákmi a sterilizuje sa pri 1 atm počas 15 minút.
Streda 10. Streda Bulir. Kіl mäsovo-peptónový vývar pridajte 12,5 g manitolu a 6 ml 1% neutrálneho roztoku. Médium sa naleje do skúmaviek s plavákmi a sterilizuje sa pri 0,5 atm počas 30 minút. Médium má čerešňovú farbu, rozvojom E. coli sa stáva oranžovým a v plaváku sa hromadí plyn.
Kolónie dominujúce na pevnom médiu sa skúmajú mikroskopicky. Na zistenie baktérií kyseliny maslovej zo skúmaviek so zemiakmi sa pripraví prípravok v rozdrvenej kvapke s prídavkom Lugolovho roztoku.
Stanovenie kyslosti
Stanovenie celkovej kyslosti v siláži. Odoberie sa 20 g vzorka siláže a vloží sa do 500 ml kužeľovej banky so spätným chladičom. Obsah banky sa naleje do 200 ml destilovanej vody, dôkladne sa premieša a zahrieva sa 1 hodinu. roztoku hydroxidu sodného v prítomnosti fenolftaleínu, kým sa neobjaví stabilné, mierne ružové sfarbenie.
Celkový obsah kyselín v siláži vyjadrený ako kyselina mliečna sa vyjadruje v percentách. 1 ml 0,1 n. Roztok NaOH zodpovedá 0,009 g kyseliny mliečnej. Vynásobením sumy číslom 0,1 n. NaOH, použitý na titráciu extraktu zo 100 g siláže, o 0,009, zistite množstvo kyseliny v sile (%).
Príklad výpočtu. Na titráciu 10 ml extraktu sa použije 1,7 ml 0,1 n. NaOH, teda 34 ml 0,1 N pôjde na 200 ml. NaOH.
Z 20 g siláže sa získa 200 ml extraktu a na neutralizáciu 100 g siláže sa použije X ml 0,1 n. NaOH:
100.34
X \u003d -¦ \u003d 170 ml 0,1 i. NaOH.
Vynásobením 170 x 0,009 dostaneme percento kyseliny mliečnej:
170 x 0,009 = 1,53 %
Dostatočne presné výsledky sa získajú aj vtedy, ak sa stanovenie kyslosti uskutoční nasledujúcim spôsobom. Odoberte vzorku siláže 5 g, rozdrvte v mažiari a vložte do širokej skúmavky (priemer 2-
cm). Obsah sa naleje do 50 ml destilovanej vody, uzavrie sa gumovou zátkou a dôkladne sa premieša. Časť siláže sa podáva infúziou pri teplote 10-12 °C počas 30 minút a potom sa titráciou stanoví kyslosť extraktu. 10 ml extraktu (s dvojnásobným množstvom destilovanej vody) sa titruje 0,1 i. roztoku hydroxidu sodného v prítomnosti fenolftaleínu, kým sa neobjaví stabilné, mierne ružové sfarbenie.
Príklad výpočtu. Na titráciu 10 ml extraktu sa použije 1,7 ml 0,1 n. NaOH teda na 50 ml extraktu-
ml; Z 5 g siláže sa získa 50 ml extraktu a na neutralizáciu 100 g siláže X ml 0,1 N. NaOH:
100.8,5
X = L = 170 ml 0,1 n. NaOH;
5
170 x 0,009 = 1,53 % kyseliny mliečnej.
Stanovenie pH v sile. Príprava silážneho extraktu na stanovenie pH v ňom sa vykonáva rovnakým spôsobom ako pri stanovení celkovej kyslosti v sile. pH sa zisťuje pomocou indikátorov alebo elektrometrického stanovenia. Pri používaní indikátorov postupujte nasledovne. Odoberte 2 ml silážneho extraktu do porcelánového pohára a pridajte 2 kvapky indikátora (zmes rovnakých objemov brómtymolovej modrej a metylroth). Porovnaním farby obsahu pohára s údajmi nižšie určite koncentráciu vodíkových iónov. Farba indikátora pH Červená 4,2 a nižšia Červeno-oranžová 4,2-4,6 Oranžová 4,6-5,2 Žltá 5,2-6,1 Žltozelená 6,1-6,4 Zelená 6,4- 7,2 Zeleno-modrá 7,2-7,6 Materiály a vybavenie. Váhy a závažia, 500 ml kužeľové banky s refluxom, široké skúmavky, trojnožka s azbestovými sieťkami, 100 ml a 250 ml banky, lieviky, papierové filtre, 10 ml a 2 ml pipety, porcelánové poháre, pinzeta; indikátory: zmes rovnakých objemov brómtymolovej modrej a metylrothu, fenolftaleínu, metylénovej modrej, Lugolov roztok (1: 2).
Živné pôdy, sterilné Petriho misky, sterilné 1 ml pipety, sterilná voda z vodovodu v 9 ml skúmavkách a 50 ml bankách. Poháre a skúmavky s plodinami. Mikroskop a všetko čo k mikroskopovaniu potrebujete.
KRMIŤ KVÁSOK
Kvasnice obsahujú veľa ľahko stráviteľných bielkovín, bohatých na ergosterol, ľahko premeniteľné na vitamín D, vitamíny A, B, E; bujne sa rozmnožujú, sú nenáročné na stanovište, dajú sa ľahko pestovať na odpadoch z poľnohospodárstva a priemyslu. Kŕmne kvasinky sa v súčasnosti vo veľkých množstvách pripravujú rozmnožovaním na priemyselných odpadoch vrátane rastlinných hydrolyzátov (slama, drevný odpad a pod.). Teraz sa zistilo, že kvasinky (Candida) sa dobre množia na uhľovodíkoch. To umožňuje pripraviť lacné kŕmne kvasnice na odpadových produktoch z ropného priemyslu. Okrem pridania suchých kvasníc do kŕmnej dávky sa používajú kŕmne kvasnice. Na tento účel sa do rozdrvenej a navlhčenej rastlinnej hmoty zavedie kvasinková kultúra. Občas premiešame. Kvasinky sa v krmive bohato množia, čo sa väčšinou zhoduje s jeho prekyslením. Akumulácia kyselín sa však vysvetľuje vývojom baktérií mliečneho kvasenia, ktoré vždy žijú na rastlinnej hmote. Pre aktívne rozmnožovanie kvasiniek v krmive je potrebných niekoľko podmienok: dobre pripravené živné médium (mletie, vlhkosť, teplota 25-27°C, dostatočné prevzdušnenie, pH média 3,8-4,2). Kvasinky môžu len kŕmiť, bohaté na mono- a disacharidy. V opačnom prípade sa kvasinky a baktérie mliečneho kvasenia nevyvinú. Okrem koncentrátov sa sukulentné krmivá podrobujú kvaseniu, ku ktorému sa primiešava objemové krmivo.
Pri kvasení koncentrovaného krmiva sa stráca 5-6% sušiny. Tieto straty pripadajú najmä na sacharidy fermentované kvasinkami.
Keď sú krmivom kvasinky, je zaujímavé, aby bolo možné krmivo obohatiť o bielkoviny vďaka zavedenému minerálnemu dusíku. Kvasinky, konzumujúce amónne soli, obohacujú substrát o bielkoviny o 13-17% (vztiahnuté na sušinu). Kvasinky krmivo príjemne okysľujú, obohacujú ho o vitamíny, stimulujú chuť do jedla u zvierat, eliminujú mnohé choroby (paratýfus, krivica mladých zvierat, kožné lézie a iné ochorenia), priaznivo ovplyvňujú produkciu mlieka u kráv, produkciu vajec u hydiny a zvýšenie prírastku hmotnosti u zvierat. |
V laboratórnej praxi sa kŕmne kvasnice môžu * vykonávať na cvikle, ktorá je predbežne nakrájaná na malé kúsky, alebo na otrubách. Krmivo sa zavádza do kalibrovanej 100 ml kadičky so sklenenou tyčinkou, v prípade otrúb navlhčenej na konzistenciu hustej kyslej smotany. Poháre na jedlo sa odvážia. Hmotnosť navlhčeného krmiva by mala byť cca 100 g. Ako štartér sa používa jednodňové šľachtenie pekárskych kvasníc na sladine v množstve 5 % (na 100 g krmiva sa pridáva 5 ml kvasnicovej suspenzie).
Jedlo sa dôkladne premieša sklenenou tyčinkou, pohár sa prekryje papierovou etiketou, na ktorej je napísaný obal pohára a hmotnosť navlhčeného jedla (bez štartéra).
Kvasené jedlo sa nechá pri izbovej teplote, pričom sa obsah pohára niekoľkokrát denne premieša.
Po 1-2 dňoch sa stanoví počet kvasinkových ‚buniek v krmive.
Účtovanie kvasinkových buniek v kvasinkovej suspenzii (kysnuté cesto)
priamym počítaním pod mikroskopom
Určité množstvo kvasnicového štartéra sa odoberie do slučky (1 slučka zachytí 0,01 ml), nanesie sa na podložné sklíčko, pridá sa rovnaké množstvo mlieka a rozotrie sa po určitej ploche (4 cm2). Prípravok sa suší na vzduchu, opatrne sa fixuje na plameni a farbí sa metylénovou modrou počas 10 minút.
Pod mikroskopom s imerzným systémom sa počíta počet kvasinkových buniek (v 10 POLI
vízia). Počet kvasnicových buniek v 1 ml kvásku sa určuje podľa vzorca:
S
-ALE. 100,
Si
kde A je priemerný počet kvasinkových buniek v jednom zornom poli;
S- štvorcová plocha (4 s.m2);
Si- oblasť zorného poľa,
Si=jrr2,
kde r je polomer šošovky určený pomocou objektívového mikrometra. Na objektový mikrometer sa nanesie kvapka cédrového oleja a pomocou imerzného systému sa na pravítku objektového mikrometra určí polomer objektívu.
Ak je r objektívu "0,08 mm, potom
S,=3,14,0,0064=0,02 mm2,
S 400 mm2
=20000.
Si 0,02 mm2
Účtovanie kvasinkových buniek v sušenom krmive
Po 1-2 dňoch sa poháre s kvasinkovým krmivom odvážia. V dôsledku fermentácie cukru a odparovania vody sa hmotnosť krmiva zmenšuje. Odoberte priemernú vzorku 10 g, pridajte do banky obsahujúcej 100 ml sterilnej vody z vodovodu a pretrepávajte 5 minút. Potom sa určitý objem suspenzie (0,01" ml-1 slučka) rozotrie na určitú plochu podložného sklíčka (4 cm2) a pridá sa 0,01 ml mlieka. Prípravok sa vysuší na vzduchu, opatrne fixuje na plameňom, farbené metylénovou modrou počas 10 minút.Počíta sa počet buniek kvasiniek v jednom zornom poli (10 zorných polí).
Priemerný počet buniek v jednom zornom poli sa vynásobí 20 000, 100 a 10, čím sa získa počet buniek na 1 g potraviny. Potom sa tento údaj vynásobí hmotnosťou krmiva a určí sa počet kvasiniek v celom krmive.
Ak chcete zistiť, koľkokrát sa zvýšilo množstvo kvasiniek počas kvasenia krmiva, je potrebné ich počet vydeliť počiatočným počtom buniek kvasiniek obsiahnutých v kvásku. Jedlo sa považuje za dobré, ak sa v jednom zornom poli nenachádza viac ako 10 cudzích bakteriálnych buniek (nie kvasiniek).
Materiály a vybavenie. Váhy a závažia, 100 ml kadičky so sklenenými tyčinkami, cvikla, otruby, kvasnicová suspenzia, 5-10 ml odmerné pipety, slučky, mlieko v skúmavkách, podložné sklíčka so štvorčekom 4 cm2 z milimetrového papiera, predmetový mikrometer, indikátor metylénová modrá, poháre s droždím. Mikroskop a všetko potrebné k mikroskopovaniu.

Epifytická mikroflóra rastlín. Bazálny a koreňový systém rastlín je osiaty veľkým počtom rôznych mikroflórov. V koreňovej zóne (rizosfére) sa nachádza veľké množstvo odumierajúcich koreňových zvyškov, ktoré sú živným substrátom pre saprofytickú pôdnu mikroflóru. Tieto baktérie sú hnilobné, ako niektorí zástupcovia črevnej skupiny nachádzajúce sa v koreňovej zóne rastlín. Okrem nich obsahuje rizosféra značné množstvo heterofermentačných baktérií mliečneho kvasenia. Počet spór tvoriacich organizmov sa stáva významným až po odumretí koreňového systému. Z plesňových húb prevládajú Penicillium a Fusarium.

Niektoré baktérie a mikroskopické huby, ktoré žijú v blízkosti koreňa, sa postupne presúvajú do prízemnej časti rastúcej rastliny a usadzujú sa na nej. Na povrchu rastlín môže existovať len určitá skupina mikroorganizmov, tzv epifytické. Na povrchu rastlín sú obsiahnuté amonifikátory, baktérie kyseliny maslovej, baktérie mliečneho kvasenia, baktérie skupiny Escherichia coli (EKG) a zástupcovia iných fyziologických skupín mikroorganizmov. Na rozdiel od iných mikróbov, epifyty dobre znášajú pôsobenie fytoncídov a slnečného žiarenia a živia sa látkami vylučovanými rastlinami. Keďže sú na povrchu rastlín, epifyty nepoškodzujú a neprenikajú do tkanív zdravej rastliny. Veľkú úlohu v tomto procese zohráva prirodzená imunita a baktericídne látky, ktoré rastliny vylučujú. Všetky rastliny produkujú fytoncídy, ktoré ovplyvňujú fyziologické procesy mikróbov.

Vzťahy medzi mikróbmi a kosenými rastlinami. Po kosení rastlín je narušená priepustnosť buniek, ničia sa baktericídne látky, ktoré bránili prenikaniu mikróbov do ich tkanív. Aktivujú sa všetky mikroorganizmy, ktoré boli na povrchu rastlín: hnilobné, maslové, mliečne baktérie a plesne atď. Mikroorganizmy a predovšetkým huby svojim intenzívnym rozvojom znižujú kvalitu krmiva a jeho nutričnú hodnotu. Pod vplyvom Aspergillus, Penicillium sa menia tuky, potom sacharidy a bielkoviny, v krmive sa hromadia rôzne produkty rozkladu, ktoré dramaticky menia vôňu a chuť krmiva, medzi nimi organické mastné kyseliny, amoniak a peptóny. Tieto procesy sú obzvlášť aktívne pri vysokej vlhkosti a teplote.

V hlbokých vrstvách krmiva sa vyvíjajú anaeróbne baktérie a na povrchu aeróbne baktérie a plesne. V dôsledku ich životnej činnosti dochádza k rozkladu zložiek krmiva, čo vedie k strate živín a znehodnoteniu krmiva. Získava hnilobný zápach, vlákna sa ľahko trhajú, ich konzistencia sa rozmazáva. Takéto krmivo zvieratá zle konzumujú a môže spôsobiť otravu krmivom.

S e n o. Sušenie je najstarší a najbežnejší spôsob konzervovania zelenej hmoty a iných krmív (obilia, slama). Podstata tohto procesu spočíva v tom, že pri sušení sú mikrobiologické procesy v krmive pozastavené z dôvodu odstraňovania „voľnej“ vody z krmiva, ktorá tvorí väčšinu vlhkosti prítomnej v krmive. Ak teda čerstvá tráva obsahuje 70-80% vlhkosti, tak len 12-16% v sene. Zvyšná voda v krmive je „viazaná“ voda a nemôže podporovať rozvoj mikroorganizmov. Úlohou sušenia je teda odstrániť prebytočnú vodu z krmiva s čo najmenšou stratou organických látok. Počas sušenia sa počet životne dôležitých mikroorganizmov na povrchu krmiva postupne znižuje, no napriek tomu je v nich vždy možné nájsť väčšie či menšie množstvo epifytnej a saprofytickej mikroflóry, ktorá pochádza zo vzduchu a pôdy. Reprodukcia saprofytickej mikroflóry v dôsledku zvýšenej vlhkosti vedie k výraznému zvýšeniu teploty. Toto zvýšenie teploty spojené s vitálnou aktivitou mikroorganizmov sa nazýva termogenéza.

Príprava obyčajného sena. Seno sa vyrába z pokosených tráv, ktoré majú vlhkosť 70-80% a obsahujú veľké množstvo voľnej vody. Takáto voda vytvára priaznivé podmienky pre rozmnožovanie epifytnej mikroflóry, ktorá spôsobuje hnitie trávy. Sušenie trávy na vlhkosť 12-17% zastaví mikrobiologické procesy, čím sa zastaví ničenie sušených rastlín.

Po vysušení sa v sene zachová veľké množstvo epifytnej mikroflóry, ale keďže nie sú podmienky na ich rozmnožovanie, sú v anabiotickom stave. Keď sa voda dostane na sušené seno, aktivita mikroorganizmov sa začne zintenzívňovať, čo vedie k zvýšeniu teploty na 40-50 0 C a viac. Pri samoohrievaní rastlinnej hmoty dochádza k výraznej zmene mikroflóry. Najprv sa v zohriatej hmote množia mezofilné baktérie. So zvýšením teploty ich nahrádzajú termofily, schopné vývoja pri teplotách do 75-80 0 C. Karbonizácia rastlinnej hmoty začína pri teplote okolo 90 0 C, pri tejto teplote mikroorganizmy zastavujú svoju činnosť, ďalej procesy prebiehajú chemicky. Vznikajú horľavé plyny – metán a vodík, ktoré sa adsorbujú na poréznom povrchu zuhoľnatených rastlín, v dôsledku čoho môže dôjsť k samovznieteniu. K vznieteniu dochádza len za prítomnosti vzduchu a nedostatočne zhutnenej rastlinnej hmoty.

Mikroorganizmy nevyužijú všetku energiu spotrebovaných živín, prebytočná energia sa do okolia uvoľňuje najmä vo forme tepla. Čím vyššia je teplota ohriateho krmiva, tým nižšia je jeho kvalita. Ale fenomén termogenézy nie je vždy škodlivý. V severných oblastiach, kde je málo tepla a vysoká vlhkosť vzduchu, sa z neho vyrába hnedé seno.

Výroba hnedého sena Je rozšírený v tých oblastiach, kde je kvôli klimatickým podmienkam náročné sušenie sena. Na sušenie krmiva sa nepoužíva slnečná energia, ale teplo uvoľnené v dôsledku životnej aktivity mikroorganizmov vyvíjajúcich sa v rastlinnej hmote. Pokosená a dobre vysušená tráva sa skladá do malých kôp, potom do stohov a stohov. Keďže rastlinná hmota stále obsahuje voľnú vodu, začnú sa množiť mikroorganizmy, uvoľňuje sa teplo, ktoré rastliny vysušuje. O mesiac neskôr, so zánikom mikrobiologických procesov, sa rastlinná hmota ochladí, ktorá sa môže skladovať dlho. Takto pripravené seno stráca svoju prirodzenú farbu, zhnedne, ale zvieratá ho ľahko zožerú.

senáž - je to druh konzervy získavanej zo sušených bylín, najmä strukovín, zbieraných na začiatku pučania.

Vedecké štúdie uskutočnené v posledných rokoch ukázali, že obzvlášť sľubným spôsobom konzervovania rôznych bylín, predovšetkým ďateliny a lucerny, je príprava takzvanej senáže z nich.

Technológia prípravy senáže zahŕňa kosenie, vyrovnávanie a ukladanie sušenej trávy do skladu. Získať kvalitnú senáž a znížiť jej straty pri skladovaní na minimum je možné len pri kladení krmiva v kapitálových skladoch – vežiach a zákopoch. Zákopy sú jednoduchšie a ľahšie sa používajú ako veže. Na prípravu kvalitnej senáže sa jemne rozdrvené rastliny (veľkosť častíc 2-3 cm) umiestňujú do skladovacích priestorov, čím je zabezpečená tekutosť a zhutnenie krmiva, hmoty sa starostlivo ubíjajú a čo je veľmi dôležité, senáž sa má zbierať. za 2-4 dni, t.j. v krátkom čase. Nedostatočné zhutnenie a dlhé časy znášky spôsobujú nežiaduce zvýšenie teploty, čo zhoršuje stráviteľnosť a stratu organickej hmoty krmiva. Po naložení skladu sa senáž prikryje vrstvou čerstvo pokosenej trávy, potom igelitom a navrchu vrstvou zeminy a rašeliny.

Bezpečnosť a kvalita senáže závisí od stupňa utesnenia skladu. s prístupom vzduchu začínajú hnilobné procesy, ktoré vedú k znehodnoteniu krmiva.

Na rozdiel od konvenčnej siláže, ktorej bezpečnosť je daná akumuláciou organických kyselín do pH 4,2-4,4, sa konzervácia senáže dosahuje vďaka fyziologickej suchosti suroviny skladovanej v anaeróbnych podmienkach. Ak je vlhkosť konzervovanej hmoty v rozmedzí 40-50%, potom je dobre fermentovaná a aj pri nedostatku sacharidov poskytuje vysoko kvalitné potraviny. Zároveň môže byť pH krmiva dosť vysoké - asi 5,0. Je to spôsobené tým, že hnilobné baktérie majú nižší osmotický tlak ako baktérie mliečneho kvasenia. Po vysušení krmiva sa v ňom zastavia hnilobné procesy, ale pôvodcovia mliečneho kvasenia pôsobia ďalej. Na tom je založená príprava senáže, keď sa do špeciálneho výkopu položí trochu vysušená hmota, ako pri silážovaní za studena.

Senáž má vlastnosti bližšie k zelenej hmote ako obyčajná siláž. Ide o čerstvé krmivo, jeho kyslosť zodpovedá hodnote pH 4,8-5,0, takmer úplne zadržiava cukor, pričom v siláži sa mení na organické kyseliny.

Pri uvedenej vlhkosti rastlín sa môže intenzívne rozvíjať iba pleseň. Plesne sú prísne aeróbne, preto nevyhnutnou podmienkou na prípravu senáže je jej spoľahlivá izolácia od vzduchu. Vzduch zostávajúci v konzervovanej hmote je rýchlo využitý na dýchanie ešte živými rastlinnými bunkami a všetok voľný priestor medzi časticami rozdrveného krmiva je vyplnený oxidom uhličitým.

Na prípravu kvalitnej senáže teda musia byť splnené dve podmienky:

1) znížiť vlhkosť rastlinná hmotnosť do 45-55%;

2) vytvorte prísny anaeróbne podmienky aby sa zabránilo rozvoju hnilobných baktérií a plesní.

Technológia výroby senáže je však založená nielen na fyzikálnych, ale aj mikrobiologických procesoch, ktoré sú pomalšie ako pri silážovaní. V siláži sa maximum mikroorganizmov nahromadí už 7. deň a v senáži ich počet dosahuje maximum až 15. deň, t.j. mliečne kvasenie pri senáži prebieha oveľa slabšie ako pri silážovaní a závisí od vlhkosti a druhu konzervovaných surovín. Preto je hodnota pH v senáži vyššia ako v siláži a pohybuje sa od 4,4 do 5,6. Podľa A. A. Zubrilina a kol. (1967) je počet mikróbov kyseliny mliečnej v senáži 4-5 krát nižší ako v siláži. . V tomto smere obsahuje senáž v porovnaní so silážou viac nespotrebovaného cukru.. Ak sa teda v siláži všetok cukor premení na organické kyseliny, potom asi 80 % cukru zostane v senáži. V dôsledku vytvárania nepriaznivých podmienok pre rozvoj mikroflóry v konzervovaných krmivách, eliminácie úniku šťavy a mechanického úbytku listov a súkvetí pri zbere a skladovaní senáže celková strata živín v senáži nepresahuje 13-17%. Teda , senáž spája pozitívne vlastnosti sena a siláže.

Na rozdiel od siláže, senáž s nízkou vlhkosťou nezamŕza, čo zjednodušuje jej vykladanie a kŕmenie zvierat. Senáž možno zbierať zo všetkých bylín, pretože. na rozdiel od siláže nezáleží na tom, koľko ľahko skvasiteľných uhľohydrátov je v tráve a do ktorej silážnej skupiny tieto rastliny patria.

Mikrobiológia silážovania krmovín. Pojem silo je prastarého pôvodu, v španielčine znamená jama na skladovanie obilia (v súčasnosti už stratila svoj pôvodný význam). Takéto sýpky boli bežné v mnohých oblastiach pobrežia Stredozemného mora. Dokonca aj 700 rokov pred naším letopočtom majitelia pôdy z Grécka, Turecka a severnej Afriky široko používali takéto jamy na skladovanie obilia. Postupom času sa tento princíp používal na skladovanie a konzervovanie zelenej hmoty.

Silážovanie – komplexný mikrobiologický a biochemický proces konzervácie sukulentnej rastlinnej hmoty.

Podstata silážovania spočíva v tom, že v dôsledku fermentácie rastlinných sacharidov enzýmami baktérií mliečneho kvasenia sa v silážovanej hmote hromadí sa kyselina mliečna, ktorá má antimikrobiálne vlastnosti, v dôsledku čoho krmivo nehnije a získava stabilitu pri skladovaní.

Pre získanie kvalitnej siláže as čo najmenšími stratami je potrebné dodržiavať určité podmienky.

1. Používať na silážovanie krmiva obsahujúceho dostatočné množstvo ľahko silážovateľného sacharidy(kukurica, slnečnica, hrach, zelený ovos, lúčne trávy) alebo ich pridajte do rastlín, ktoré nie sú na siláž.

2. Na vytvorenie je potrebné silážnu hmotu dobre izolovať od vzduchu anaeróbne podmienky, za ktorých sa vytvárajú nepriaznivé podmienky pre rozmnožovanie hnilobných a plesňových mikroorganizmov

3. Silážované krmivo musí mať optimálne vlhkosť- 65-75%, pri ktorej dochádza k intenzívnej tvorbe organických kyselín. Silážna hmota sa pri nízkej vlhkosti zle zhutňuje, je v nej veľa vzduchu, vytvárajú sa podmienky na samozohrievanie, rozvoj plesní a hnilobných baktérií.

4. V silážnej hmote by mala byť optimálna teplota pre rozvoj baktérií mliečneho kvasenia 25-30 0, pri tejto teplote prebieha normálny proces fermentácie krmiva s malou stratou živín. Hotová siláž je stredne kyslá, žltozelenej farby, s príjemnou špecifickou vôňou.

Biochémia mikrobiologických procesov pri silážovaní.

Baktérie produkujúce kyselinu mliečnu sú veľkou rôznorodou skupinou, ktorá zahŕňa kokoidné aj tyčinkovité formy.

Baktérie mliečneho kvasenia sú rozdelené do dvoch hlavných skupín podľa kvality konečných produktov fermentácie:

Homofermentatívna e, tvoriace z nimi fermentovaných sacharidov najmä kyselinu mliečnu a len stopy rôznych vedľajších produktov. Typickými predstaviteľmi tejto skupiny sú streptokoky kyseliny mliečnej a bacily kyseliny mliečnej. Touto fermentáciou sa získa produkt s príjemnou kyslou chuťou a vôňou.

heterofermentatívny, tvoriace okrem kyseliny mliečnej aj značné množstvo vedľajších produktov (etylalkohol, kyselina octová, oxid uhličitý). Medzi nimi sú kokálne a tyčinkovité formy.

Pre rozvoj všetkých baktérií mliečneho kvasenia v rastlinnej hmote musia byť ľahko stráviteľné sacharidy. Schopnosť produkovať kyselinu mliečnu sa u rovnakého typu mikroorganizmov líši od mnohých faktorov, vrátane kvality živného substrátu. Takže, keď sú hexózy fermentované, tvoria kyselinu mliečnu ako hlavný produkt, ktorý sa získa v dôsledku rozdelenia jednej molekuly cukru na dve molekuly kyseliny mliečnej podľa nasledujúcej rovnice:

C6H1206 \u003d 2C3H603

Počas fermentácie budú pentózy v konečných produktoch fermentácie vždy obsahovať viac kyseliny octovej ako pri fermentácii, napríklad hexóza - glukóza alebo fruktóza. A keďže pentosany sú súčasťou rastlinnej hmoty, prítomnosť kyseliny octovej v hotovej siláži je tiež výsledkom životne dôležitej aktivity kyseliny mliečnej, a nie baktérií kyseliny octovej. Preto aj v dobrej siláži je vždy určité množstvo kyseliny octovej. (Danilenko I.A. a kol., 1972). A ak je v zložení organických kyselín najmenej 65-70% mliečnej a octovej 30-35%, potom fermentácia prebehla správne. Existujú dva spôsoby silážovania: studený a horúci.

studený spôsob silážovanie sa vyznačuje tým, že dozrievanie siláže prebieha pri teplote 25-30 0 C. Pri takomto silážovaní sa rozdrvená rastlinná hmota pevne ukladá do výkopu, a zhora sa izoluje od vzduchu, aby sa vytvorili anaeróbne podmienky, za ktorých sa vyvíja hnilobných baktérií a plesní je potlačený. Nevyhnutnou podmienkou na získanie vysokokvalitného krmiva je rýchla izolácia silážovanej hmoty od vzduchu, preto by trvanie plnenia výkopu nasekanou zelenou hmotou nemalo presiahnuť 3-4 dni. Aby sa zabránilo samovoľnému zahrievaniu (termogenéze), je potrebné nasekanú zelenú hmotu ukladať rýchlo a súvisle, za stáleho zhutňovania.

S horúcou metódou silážovaním sa zelená hmota položí voľne, s vrstvou 1,0-1,5 m na 1-2 dni, potom sa položí druhá vrstva v rovnakej hrúbke ako prvá. S prístupom kyslíka sa v rastlinnej hmote rozvinú energické mikrobiologické procesy, v dôsledku ktorých teplota krmiva vystúpi na 45-50 0 C. Spodná vrstva rastlín, zmäknutá vysokou teplotou, je stlačená pod ťarchou novú vrstvu krmiva. To spôsobí odvod vzduchu zo spodnej vrstvy, takže aeróbne procesy sa zastavia a teplota začne klesať. Posledná vrchná vrstva je zhutnená a pevne pokrytá, aby bola chránená pred vzduchom. Prehriata siláž má hnedú farbu, vonia po jablkách alebo ražnom chlebe a zvieratá ju dobre žerú. Nutričná hodnota siláže varenej za tepla je však výrazne nižšia ako siláže varenej za studena.

Proces silážovania možno rozdeliť zhruba do troch fáz.

Prvá fáza silážovanie sa nazýva fáza zmiešanej mikroflóry. V rastlinnej hmote sa začína rýchly rozvoj epifytnej mikroflóry (hnilobná, kyselina mliečna, maslová, mikroskopické huby, kvasinky) zavádzanej krmivom. Trvanie prvej fázy závisí od kvality krmiva, hustoty balenia, teploty prostredia, ale častejšie je krátkodobé.

V druhej fáze – hlavná fermentačná fáza- hlavnú úlohu zohrávajú baktérie mliečneho kvasenia, ktoré vylučujú kyselinu mliečnu. Pri optimálnom obsahu cukru v rastlinnej hmote vedie intenzívna mliečna fermentácia k tvorbe značného množstva organických kyselín (hlavne mliečnych), ktoré sú potrebné na okyslenie krmiva na pH 4,2-4,4. Na začiatku tejto fázy sa koky množia, potom, ako sa zvyšuje kyslosť, sú nahradené kyselinovzdornými bacilami kyseliny mliečnej. Kyselina mliečna má antimikrobiálne vlastnosti, takže väčšina hnilobných baktérií zahynie, ale spórotvorné formy vo forme spór môžu v silážovanom krmive dlho pretrvávať.

Tretia fáza- konečné - spojené s postupným vymieraním patogény mliečnej fermentácie v zrejúcej siláži. Kyselina mliečna, keď sa nahromadí vo vysokých koncentráciách, sa stáva škodlivou pre tyčinky kyseliny mliečnej, ktoré spolu so zvyšnými kokmi začnú odumierať. Týmto spôsobom sa zníži počet baktérií v krmive a proces silážovania dôjde k prirodzenému záveru.

Zloženie epifytnej mikroflóry rastlinných materiálov zahŕňa rôzne mikroorganizmy (mikroskopické huby, maslové baktérie, E. coli), ktoré sa pri narušení technologického procesu môžu aktivovať a spôsobiť nežiaduce procesy.

plesňové huby dobre znášajú kyslé prostredie (pH do 1,2) a aktívne sa množia v siláži so slabou izoláciou od vzduchu. Pre svoju životnú aktivitu využívajú sacharidy, pri ich nedostatku kyselinu mliečnu a octovú. Zároveň sa výrazne zhoršuje kvalita siláže a zaznamenáva sa toxický vplyv plesnivého krmiva na organizmus zvieraťa. Spoľahlivými opatreniami na zamedzenie rozvoja plesňových húb v sile je dobré utesnenie síl a vytvorenie priaznivých podmienok pre rozvoj mliečneho kvasenia.

Baktérie zo skupiny Escherichia coli sú heterofermentatívne mikroorganizmy, ktoré okrem sacharolytických vylučujú aj proteolytické enzýmy štiepiace rastlinné bielkoviny na amoniak, čím znižujú hodnotu silážovaného krmiva.

Nežiaduce pre proces silážovania a maslové baktérie, čo sú prísne anaeróby. V procese života používajú cukor, kyselinu mliečnu a niektoré aminokyseliny. To je sprevádzané hnilobným rozkladom bielkovín, hromadením kyseliny maslovej a iných vedľajších produktov škodlivých pre živočíšny organizmus. Prítomnosť kyseliny maslovej je indikátorom hnilobného rozkladu bielkoviny s miernym zvýšením kyseliny mliečnej v siláži. Zníženie pH média na 4,2 zabraňuje rozvoju maslovej fermentácie pri silážovaní krmovín.

Kŕmiť kvasnice. Ide o mikrobiologický spôsob prípravy krmiva na kŕmenie. AT chemické zloženie kvasnice obsahujú 48-52% bielkovín, 13-16% sacharidov, 2-3% tukov, 22-40% bezdusíkových extraktív a 6-10% popola. Kvasnice obsahujú veľa esenciálnych aminokyselín: arginín, histidín, lyzín, leucín, tyrozín, treonín, fenylalanín, metionín, valín, tryptofán, ktorých je v rastlinnej potrave málo. Droždie obsahuje veľa vitamínov skupiny B, vitamín D provitamín 2, ako aj vitamíny E, C atď. A na rozdiel od iných zdrojov bielkovín majú vysokú reprodukčnú rýchlosť a sú nenáročné na kvalitu zdrojov živín. Použitie droždia nie je náhodné, napríklad 500 kg droždia dá 80 kg bielkovín denne a u býka rovnakej hmotnosti je denný prírastok v lepšom prípade 500-800 g bielkovín.

Pri fermentácii krmiva je potrebné vytvárať priaznivé podmienky pre rozmnožovanie kvasinkových buniek: prítomnosť ľahko skvasiteľných sacharidov s obsahom mono- alebo disacharidov, dostatočné prevzdušnenie (inak kvasinky prejdú na anaeróbny typ dýchania, ktorého konečný produkt je etylalkohol), priaznivá teplota 25-30 0 C a pH v rozmedzí 3,8-4,2. Pre kvasinky sú vhodné kŕmne zmesi pripravené z odpadu z produkcie obilia, okopanín, dužiny, ku ktorým sa primiešava objemové krmivo. zmesi bohaté na sacharidy a chudobné na bielkoviny (vylúčiť krmivá živočíšneho pôvodu, na ktorých vznikajú hnilobné, maslové a iné nežiaduce mikroorganizmy).

Pre kvasnicové krmivo je potrebné zvoliť suchú a svetlú miestnosť, aby sa zabránilo kontaminácii kvasnicového krmiva spórami plesní, medzi ktorými môžu byť patogény mykotoxikózy.

Existujú tri typy kvasenia kvasníc: nepárové, kváskové a kváskové.

Bezpečný spôsob vyznačujúci sa tým, že 1% zriedených kvasníc sa okamžite pridáva do celej hmoty krmiva. Zmes sa mieša každých 30 minút počas 8-10 hodín, potom je jedlo pripravené na kŕmenie.

S parnou metódou, najskôr pripravte cesto, ktoré potom pridajte do kváskového krmiva. Na tento účel sa droždie (1 % hmotnosti krmiva) zriedi a zmieša s jednou pätinou krmiva, pričom sa mieša 6 hodín. Potom sa do cesta pridá zvyšok jedla, dvojnásobné množstvo vody a kvások pokračuje ďalšie 3 hodiny za stáleho miešania, aby sa dostal vzduch.

štartovacia metóda používame s nedostatočným množstvom droždia, preto si najskôr pripravíme kvások. Na to 0,5 kg lisovaného droždia množiť v malom množstve dobre kvasiaceho sacharidového krmiva (odpad z produkcie obilia) pri 30-35 0 C, po 5 hodinách môžu byť použité ako štartér. Pripravená porcia krmiva sa sladuje zaliatím vriacou vodou - sladovanie prebieha do 5 hodín pri teplote nie nižšej ako 60 0 C. Do sladového krmiva sa pridáva rovnaké množstvo vody a polovica kvásku, premiešajte a nechajte 6 hodín na teplom mieste, potom je jedlo pripravené na kŕmenie. Druhá časť zvyšného kvásku môže byť použitý 5-10 krát na fermentáciu nových dávok krmiva, potom stráca aktivitu.

Kvasenie krmiva zlepšuje kvalitu krmiva a obohacuje krmivo o vitamíny, zatiaľ čo prítomnosť kyseliny mliečnej zvyšuje chuť do jedla u zvierat.